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【新手快速入門】miRNA的qPCR檢測

瀏覽次數:7168 發布日期:2016-5-4  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

測序技術的引入促使miRNA研究領域進入快速發展階段,然而qPCR仍是驗證測序數據的重要標準。本文將為您介紹使用qPCR進行miRNA分析的基本要點,希望能幫助新人快速入門。

什么是miRNA?

miRNA是一類小的非編碼RNA,能夠與RNA誘導沉默復合物(RISC)結合,通過作用于mRNA,進而介導轉錄后基因表達。通常情況下,miRNA-RICS復合物能夠通過阻斷靶標miRNA的翻譯或促使其降解,從而起到抑制mRNA表達的作用。多數miRNA長度約為18‒22個核苷酸,在樣本中的總RNA量中僅占很小的一部分。通常認為總RNA中miRNA的量大約為0.01%(1)。

經過多年研究,一些mRNA與其相應miRNA之間的調控作用已經取得了較多的數據積累。miRNA參與的生物過程包括分化、發育、信號轉導和宿主感染應答。此外,多項研究結果表明,miRNA表達失調是癌癥等疾病的病因,或是某些疾病的指標。循環miRNA表達與疾病有關,并且血清和血漿中能作為檢測樣本來源,因此循環miRNA極有潛力成為疾病相關生物標志物。

目前的miRNA檢測技術

探究miRNA在細胞水平的功能和轉錄后的調控機制,必須采用適宜的檢測方法。目前常用的方法包括定量real-time PCR、深度測序和微芯片。每種方法都有其各自的優缺點,下文會為您詳細說明。

定量逆轉錄PCR(RT-qPCR)

在《Annual Review of Analytical Chemistry》的一篇文章中提到,“如果選擇一種方法作為miRNA檢測的金標準,則非RT-qPCR莫屬。(1)”之所以這樣說,是因為qPCR的多項特性都滿足miRNA檢測的關鍵要求:該方法準確且經濟,無需大量的樣本,并且檢測范圍靈活。使用qPCR檢測RNA時,需要留意若干重要因素,包括RNA的純度與質控、cDNA合成、引物設計、檢測和數據均一化。檢測血液中的miRNA時,數據均一化較為挑戰,需要特別考量以進行有效的均一化化并獲得有意義的數據結果。

1 第一步:cDNA合成

RT-qPCR的第一步是將樣本中提取的RNA逆轉錄為cDNA。這一步通常面臨的問題包括:(1)模板僅有大約22個核苷酸,(2)成熟體miRNA、前體miRNA和初級轉錄物并存。

目前逆轉錄miRNA主要有兩種方法:

  • -使用不同miRNA的特異性引物進行逆轉錄

  • -使用樣本中所有miRNA的通用引物進行逆轉錄

每種方法都有各自的優勢和缺點。miRNA特異性逆轉錄引物能夠有效降低背景噪音,而通用引物則適合于同時研究多種不同miRNA的情況。通用引物通常需要加入poly(A)尾巴和oligo-dT引物,為后續所有miRNA的cDNA同時合成提供基礎。QIAGEN的miScript II RT Kit能夠進行簡便的一步法cDNA合成,實現對樣本中所有miRNA的檢測。該試劑盒含有兩種緩沖液miScript HiSpec Buffer和miScript HiFlex Buffer,能夠特異性的只逆轉錄成熟體miRNA或將全部RNA轉化為cDNA,以滿足不同的研究需求。

2 第二步:miRNA特異性引物設計

cDNA合成后,即可開始qPCR。在qPCR中需要使用合適的引物。目前常用的兩種miRNA qPCR熒光染料為SYBR Green和雙標記水解探針。

SYBR Green為嵌入型染料,結合在DNA的堿基之間。結合到dsDNA上之后,熒光強度增強約100倍,實現PCR過程中對擴增產物的檢測。SYBR Green方法的顯著優勢是無需為不同miRNA設計特異性探針。然而由于SYBR Green法會檢測到非特異性PCR產物和引物二聚體,需要通過熔點或熔解曲線分析驗證反應特異性。在溫度從65⁰C到95⁰C的逐漸升溫過程中,記錄熒光強度,當DNA鏈開始解離時,熒光強度降低(2)。如果熔解曲線只有一個峰,則表示反應中未生成非特異性擴增產物。

與SYBR Green法不同,雙標記水解探針不會檢測非特異性PCR產物,但使用序列特異性探針時PCR特異性仍然不容忽視——人工產物會致使真正的PCR產物產量降低。特異性產物和人工產物對于反應成分的競爭,可能會影響分析靈敏度和效率。

3 第三步:內參RNA的選擇與數據均一化

為通過real-time PCR達到準確、可重復的miRNA定量結果,需要采用合適的內源性參比miRNA對被測miRNA的量進行均一化。這一方法被稱為相對定量。均一化能夠避免不準確的定量結果,并且可實現不同實驗和不同樣本檢測結果之間的直接比較。用于real-time PCR miRNA檢測數據均一化化的理想內參RNA應滿足以下要求:

  • -研究所涉及的所有樣本具有穩定的表達水平

  • -大小與被測miRNA相似

  • -表達水平與被測miRNA相似

  • -在實驗條件下表達水平不會被調控

  • -內源性參比RNA和miRNA的引物應具有相似的擴增效率(接近100%)

QIAGEN的miScript PCR Controls滿足以上各項要求,能夠通過ΔΔCT方法對人類、大鼠、小鼠和狗等多物種的miRNA進行準確、可靠的相對定量。

QIAGEN在miRNA等非編碼RNA的定量及功能研究領域均有十分全面的解決方案,適用于單細胞、循環體液、FFPE、exosomes等多種疑難樣本中miRNA的全面研究,檢測體系操作簡單并完全經過實驗驗證,確保結果的準確獲得。

二代測序/RNA-seq

毫無疑問,NGS將成為miRNA研究的主要方法。NGS的成本和所需時間已經顯著下降,miRNA-seq對于很多實驗室來說已不再高不可攀。NGS不會單純取代其他技術,而是會與其他技術結合使用。測序結果需要驗證,qPCR的可靠性使其成為結果驗證的理想選擇。當實驗需要序列信息時,如發現新型miRNA、探尋isomiRs的影響、或區分miRNA與其他相似RNA序列,miRNA測序法便成為研究人員的不二之選。

芯片法

芯片法能夠對一個樣本中的多種miRNA同時進行分析(1)。微芯片的優勢在于對miRNA的種類覆蓋度和定制化檢測。然而,其劣勢包括:

  • -微芯片為半定量方法。因此盡管這種方法能比較不同細胞狀態的miRNA相對表達水平,但需要另外驗證,進行定量,驗證方法包括RT-qPCR(1)

  • -此類實驗需要特定儀器和軟件

  • -這種方法只能用于已知種類的miRNA

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