羊源性成分核酸檢測試劑盒（恒溫熒光法）

◆ 產品說明

物種鑒定系列基于獨特的恒溫熒光檢測技術，可針對食品、飼料等樣品中動物源性成分的特異核酸片段進行擴增，儀器實時監測擴增過程中的熒光信號變化，自動判讀結果。本產品用于羊源性成分的檢測，檢出限為0.5%。

◆ 產品組成（48測試）

◆ 適用儀器

    Dhelix 1610、Dhelix 3210、ESE Tube Scanner、Genie II、Deaou-308c等恒溫熒光檢測儀，ABI 7500，LightCycler480，CFX 96等熒光PCR儀。 

◆ 自備耗材和儀器

①滅菌1.5mL或2.0mL離心管；②滅菌0.2mL PCR管或八聯管；③冰盒；④移液器（0.5-10μL，10-100μL，100-1000μL）及配套滅菌吸頭；⑤離心機；⑥渦旋混勻器；⑦金屬浴

◆ 注意事項

1．本試劑檢測靈敏度高。為了防止污染，實驗要分區操作。

   1）第一區：試劑準備區。

   2）第二區：樣本制備區。

 3）第三區：模板添加區。

   4）第四區：擴增及產物分析區。

   ★ 分區之間最好進行物理性隔離，避免人為因素造成的污染。

2．實驗過程中穿戴工作服和乳膠手套，不同區域獨立使用工具，需更換手套和實驗服。

3．嚴格按照操作步驟操作，試劑配制和加樣等步驟請嚴格按照說明書要求在冰盒上操作。

4．反應液中的成分對光敏感，應避光保存。試劑使用前要完全解凍，但應避免反復凍融，推薦使用前離心30秒，并按檢測頻次將反應液以適當體積分管保存。

5．反應結束后，擴增管請置于密封袋內丟棄，當日清理，開蓋易造成氣溶膠污染，禁止開蓋。

6．不同批號試劑請勿混合使用，在有效期內使用。

◆ 樣品處理

參照《SB/T 10923-2012 肉及肉制品中動物源性成分的測定 實時熒光PCR法》或其他標準處理樣品，制備的樣本保存待用。

①樣品的采集和制備是動物源性鑒別的重要步驟，為防止交叉污染，應使用一次性消耗品，研缽應經160℃干烤2h，其他不宜干烤或高壓處理的器皿應使用1%次氯酸鈉溶液浸泡。②取樣應盡量采取肌肉組織，對于同一批樣品，應多點采集合并后，作為一份樣品進行均質，提取DNA。③采樣過程應快速完成，將采取的樣品迅速放入組織攪碎機中進行均質成糜狀，充分混勻，取0.1g充分混勻的樣品，采用液氮研磨或均質器均質。

詳細步驟請按照標準操作或查閱食安通軟件。

◆ 實驗操作

將試劑完全解凍，各組分離心30s。

1. 試劑配制（試劑準備區，放置于冰盒中進行）：

若有N個待檢樣品，則參照下表，按照N+2個數量計算各組分用量（N個待檢樣品+1個陰性對照+1個陽性對照），將反應液置于0.6ml或者1.5ml離心管中，渦旋混勻，離心30秒，分裝于0.2ml PCR管中，并向每管加入1滴C-I（約20μl）。

2．模板制備（樣本制備區）

建議使用試劑配套動物源性成分DNA提取系列產品，具體過程詳見產品說明書。

3．添加模板（模板添加區，放置于冰盒中進行）

      在步驟1中已含有反應液的PCR管中加入2μL模板，順序為NG-I、待測樣品模板、PG-羊源-I。渦旋混勻30s，離心1min，立即進行擴增反應。

4. 擴增反應（擴增及產物檢測區）

①恒溫儀器63℃條件下反應45min。

      ②若使用熒光定量PCR儀，則熒光基團選擇FAM，淬滅基團選擇None，將63℃ 15 s，63℃ 45 s作為一個循環，于63℃ 45 s處收集熒光信號，45個循環。

其他儀器請參照儀器說明書進行設置。

◆ 結果判定

①儀器自動判定結果，若顯示“陽性”，則樣品中含有羊源性成分；若顯示“陰性”，則樣品中不含有羊源性成分或含量低于檢測限。

②在熒光定量PCR儀上，根據有無“S”型擴增曲線判定結果。若有“S”型擴增曲線，則樣品中含有羊源性成分；若無“S”型擴增曲線，則樣品中不含有羊源性成分或含量低于檢測限。

• NG反應管結果顯示“陰性”，PG反應管結果顯示“陽性”，此次檢測結果有效，否則無效。如重復檢測結果仍為無效，請與技術支持人員聯系。
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