學(xué)會用酶切法或PCR法篩選重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化成功的克隆菌。

 

利用轉(zhuǎn)化后宿主菌所獲得的抗菌素抗性性狀篩選出獲得質(zhì)粒的菌落克隆。再從這些菌落中鑒定出質(zhì)粒上帶有外源基因插入片斷的克隆菌落。

 

旋渦混合器，小鑷子，微量移液取樣器，移液器吸頭，1.5ml 微量離心管，雙面微量離心管架，干式恒溫氣浴（或恒溫水浴鍋），制冰機，恒溫搖床，超凈工作臺，酒精燈，無菌牙簽，搖菌管。

 

LB培養(yǎng)基（加抗菌素），PCR用試劑，引物，質(zhì)粒提取用試劑，酶切需要的限制性內(nèi)且酶及其緩沖液，65%甘油（65%甘油，0.1mol/L MgSO₄，0.025mol/L Tris-Cl pH8.0）。

 

無菌dd water，1.5ml離心管裝入鋁制飯盒（滅菌）、移液器吸頭裝入相應(yīng)的吸頭盒（滅菌）；牙簽（滅菌），搖菌管（滅菌），100mg/mL氨芐青霉素。

 

方法一：酶切鑒定

（1）在超凈工作臺中取3支無菌搖菌管，各加入3mL LB（含50mg/mL氨芐青霉素），用記號筆寫好編號。

（2）在超凈工作臺中將70%乙醇浸泡的小鑷子頭用酒精燈烤過，鑷取一支無菌牙簽。用牙簽的尖部接觸轉(zhuǎn)化的平板培養(yǎng)基上的一個白色菌落，然后將牙簽放入盛有3mL LB（含50mg/mL氨芐青霉素）的搖菌管中。用此法隨機取3個白色菌落，分別裝入3個搖菌管中。

（3）37℃搖菌過夜后，用堿裂解法分別提取質(zhì)粒。搖菌管中的剩余菌液保留在4℃冰箱中。

（4）將提取到的3管質(zhì)粒樣品與空質(zhì)粒同時電泳，根據(jù)分子量判斷和選區(qū)有插入片段的質(zhì)粒，然后可用酶切、與目的片段一同電泳來鑒定其上的外源插入片斷大小是否與預(yù)期相符。

（5）將經(jīng)過鑒定判斷為正確的質(zhì)粒保存。按照編號找到冰箱中原菌液。根據(jù)需要進行放大培養(yǎng)提取其質(zhì)粒或進行誘導(dǎo)表達，或取500mL菌液與500mL 65%甘油混合后-80℃保存。

（6）在被細菌污染的桌面上噴灑70%乙醇，擦干桌面，寫實驗報告。

 

方法二：快速PCR篩選法

（1）在轉(zhuǎn)化的平板培養(yǎng)基上隨機選取3個邊緣清晰的白色菌落，并用記號筆在其所在的培養(yǎng)皿底部玻璃背面畫圈做標(biāo)記編號。

（2）在0.2ml PCR 微量離心管中配制25μl反應(yīng)體系。

dd water                      16μl

10×PCR buffer（不含MgCl2）  2.5μl

25mM MgCl₂                           1.5μl

2.5mmol/L dNTP               2μl（每種dNTP終濃度0.2mM）

10μmol/L Primer1              1μl（12.5-25pmoles）

10μmol/L primer2              1μl（12.5-25pmoles）

Taq酶                       0.5μl（1.5u）

總體積                       25μl

模板質(zhì)粒： 用小tip頭輕輕粘一下選中的白色菌落，伸入PCR混合液中洗一洗

 

（2）根據(jù)廠商的操作手冊設(shè)置PCR儀的循環(huán)程序（本實驗室已經(jīng)設(shè)置為WZ）：

① 94℃ 5min

② 94℃ 1min

③ 60℃ 1min

④ 72℃ 1min50s

⑤ goto② 29 times

⑥ 72℃  10min

（2）PCR結(jié)束后，取10μl產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳（與原始插入片斷同時比對）。觀察膠上是否有預(yù)計的主要產(chǎn)物帶。

（3）按照編號找到培養(yǎng)皿中的原菌斑。根據(jù)需要進行放大培養(yǎng)提取其質(zhì)粒

（4）提取到的質(zhì)粒與原先的空載體（或已知分子量的質(zhì)粒）再對比電泳，用酶切以進一步確認。