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核酸脂質納米粒后處理注意事項:粒徑測定與除溶劑

瀏覽次數(shù):1307 發(fā)布日期:2021-9-8  來源:锘海
在我們使用微流控或其他方法合成核酸脂質納米粒后,成品溶液常常因有機溶劑的存在而極不穩(wěn)定。以常見的微流控水相、有機相合成比3:1為例,有機相溶劑常使用無水乙醇,在混合后仍然有高達25%的含量。高濃度的乙醇將逐漸破壞溶液中的納米粒子,使其粒徑逐漸增大。有的甚至能在短短數(shù)小時內由50 nm增長到200 nm,嚴重影響實驗結果和方案評估,所以合理、及時的后處理尤為重要。通常而言,后處理等同于除溶劑,但一般也會對溶液中的納米粒子進行粒徑測定。

粒徑測定通常使用動態(tài)光散射粒度儀,需要注意的是,不同品牌的粒度儀對于同一個樣品的檢測結果會有些許差別。另外,在檢測過程中,需要注意待測液體的濃度和溫度對結果造成的影響:一般而言,濃度過高的液體因散射光被大量粒子阻擋,所測出的粒徑偏差較大;而溫度決定了粒子布朗運動強度,溶液溫度沒有平衡前也會影響粒徑的檢測結果。

除溶劑則通常采用超濾或透析。超濾為主動式,速度快;透析為被動式,速度慢。有些科研工作者可能會擔心超濾的方式過于猛烈,導致納米粒子的破壞。對于這一點其實沒有必要過于擔心,一方面在超濾的過程中,并不會完全將溶劑去除——通常在剩1 – 2 mL時就停止離心;另一方面超濾相對于透析更快,雖有極少量的納米粒子破壞,卻避免了有機溶劑長期留存帶來的影響,兩害取其輕,超濾仍舊是除溶劑的有效辦法。

       超濾管

測粒徑和除溶劑的具體步驟如下:
1. 完成納米粒子的合成后(假定成品1 mL),立刻用去鈣去鎂的D-PBS進行40倍稀釋,體積為40 mL。稀釋后取0.5 – 1 mL左右進行粒徑測定,剩余39 – 39.5 mL執(zhí)行剩余步驟以除溶劑。

2. 將剩余溶液倒入超濾管中,室溫(20℃)下以2000×g的速度離心5 – 30 min,離心時間依超濾管孔徑大小而有所區(qū)別,第一次嘗試時可以密切關注超濾管中的液體,以剩余1 – 2 mL為停止信號。

3. 取出超濾管,將下方液體倒出,在超濾管上方繼續(xù)添加剩余溶液(如果步驟2沒有完全倒入超濾管中的話),并用移液槍吸取管中液體沖洗濾膜數(shù)次,按步驟2的參數(shù)再次超濾。

4. 重復步驟2 – 3,直至溶液全部濃縮至1 mL左右。用移液槍吸取管中液體沖洗濾膜數(shù)次后將液體全部吸出轉移并在生物安全柜中過0.2 μm濾膜除菌(如不進行生物實驗則無需除菌)后,即為最終品。

得到最終品后,就可根據(jù)使用者的實際需求稀釋成相應濃度,并進行動物或細胞實驗。

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