1.NK細胞培養試劑盒包含：
①無血清培養基2瓶（l000mL/瓶）：
②NK試劑A, 1支：
③NK試劑B, 1支：
④NK試劑C, 1支:
⑤NK試劑D, 1支：
⑥NK試劑E, 1支：
培養體系中需用到2支（100萬IU/支）rH IL-2
2.原材料
1.采取外周血（可從臍血、骨髓等組織）
2.需的試劑耗材包括：
0.4%苔盼藍溶液、生理鹽水、人淋巴細胞分離液（建議選用GE）、175cm²培養瓶、GT-T610 （A）培養袋、15ral/50ml/250ml離心管、移液管、1毫升無菌注射器
3.NK細胞培養時間過程:
前一天：要提前處理好細胞活化瓶（NK試劑A）
第1天：進行外周血單個核細胞分離與誘導(NK試劑B）
第3天：NK細胞第一次補液，補液50ml（NK試劑C）
第5天:NK細胞第二次補液，補液175ml (NK試劑D）
第7天：NK細胞第三次補液，裝袋并補液500ml (NK試劑E)
第9-10天：NK細胞第四次補液，分袋并補液750ml
第12天：NK細胞第五次補液.補液500ml
第13天：檢菌
第14、15天：培養成功
（細胞培養成功時間視具體細胞生長情況而定，在保持培培養基ph和細胞活力正常的情況下也可以多培養一天）
4.具體操作步驟如下：
1.頭一天一定要先處理細胞活化瓶。
2.將NK試劑A （4度保存）加入到含有12.5ml生理鹽水的175cm²底面積細胞培養瓶中，充分的混勻 30秒-1分鐘,使液體充分在瓶底分散，4度冰箱平放過夜
(NK試劑A需要和生理鹽水充分混勻平鋪在瓶底；次日取出后直接吸棄液體即可，無需清洗）
3.外周血單個核細胞分離與誘導（第1天）
4.以100ml外周血為例，如血量不同，也可按操作規程做相應調整。
5.將患者外周血，用移液訝吸取少許原血（約300 ul）劃線或滴入平皿過行檢菌。然后，正常室溫下,進行離心。
6.將上層血漿轉入離心，滅活，離心，取上清液備用。
7.使用等體積的生理鹽水與血細胞沉淀混勻后，小心加到Ficoll層上，使分層保持清晰。室溫內進行離心。
8.吸取外周血單個核細胞(PBMC）層，盡量吸盡兩液面交接處的細胞層.加生理鹽水吹打混勻，離 心。相同方法冉次洗滌細胞。
9.棄去上清后，用無血清培養基重懸細胞,吸取少量細胞計數。
10.按照細胞密度為1-2*10^6個/ml(最優為5 *10^6個/ml）,用培養基清洗離心管，并入培養瓶內，并加入1支NK試劑B，患者滅活血漿1.25ml (5%）確保培養基終體積為25ml左右。剩余血漿4°C 密封保存備用。
    注：包被瓶取出時間為細胞加入前5分鐘,其他時間需在4度放置備用。
    試劑A、B、C、D、E的取用.違議第一次吸取原液后.以適貴培養基沖洗西林瓶后再吸出，以最大程度減少損耗
11.活化培養基的配置：其中1瓶無血清培養基中，加入100萬IU的IL-2，終濃度為1000IU/mL。
      注：活化培養基每次使用前恢復至室溫。
12.NK細胞的第一補液（第3天），補加含有5%的患者滅活血漿和NK試劑C，確保培養的終體積為 75mL。
13.NK細胞的第二次補液（第5天），補加含有5%的患者滅活血漿和NK試劑D,確保培養的終體積為 250ml.
14.NK細胞的第三次補液及其裝袋（第7天），細胞轉袋前將培養瓶底部的細胞進行輕微吹散細胞，隨后將培養瓶的中的細胞懸液及其500mL活化培養基，裝入到細胞培養袋中，同時加入1支NK試劑E，及其剩余的全部血漿，確保終體積為750ml。
15.NK細胞的第四次補液（第9天），主要為分袋操作，將培養體系由750ml擴增至1500ml。
16.NK細胞的第五次補液（第!2天）.主要為補液操作，將剩余的500mL擴增液均分到2個培養袋中，確保每袋體積為1000ml。
17.檢菌，細胞培養第13天，對細胞懸液進行檢菌、內毒素檢測。用5ml注射器分別從培養瓶和袋內抽取少最細胞懸液，加入正置的平皿中，放入35℃恒溫生化培養箱， 記錄放入日期及培養物品。隔夜后倒置，保留48小時。
18.收獲，正常情況下，第13, 14天各收獲1000ml細胞懸液。若因臨床需要進行提前或延遲回輸，也可相應提前或延遲。（NK細胞建議2-4h之內使用，以保證其活性）