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IPTG誘導蛋白表達的實驗方法

瀏覽次數:3734 發布日期:2018-6-25  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

 

實驗原理:

E.coli的乳糖操縱子(元)含Z、Y及A三個結構基因,分別編碼半乳糖苷酶、透酶和乙酰基轉移酶,此外還有一個操縱序列O、一個啟動序列P及一個調節 基因I。I基因編碼一種阻遏蛋白,后者與O序列結合,使操縱子(元)受阻遏而處于關閉狀態。在啟動序列P上游還有一個分解(代謝)物基因激 活蛋白(CAP)結合位點。由P序列、O序列和CAP結合位點共同構成lac操縱子的調控區,三個酶的編碼基因即由同一調控區調節,實現基因產物的協調表 達 。

在沒有乳糖存在時,lac操縱子(元)處于阻遏狀態。此時,I序列在PI啟動序列操縱下表達的Lac阻遏蛋白與O序列結合,阻礙RNA聚合酶與P序列結 合,抑制轉錄起動。當有乳糖存在時,lac操縱子(元)即可被誘導。在這個操縱子(元)體系中,真正的誘導劑并非乳糖本身。乳糖進入細胞,經β-半乳糖苷酶催化,轉變為異乳糖。后者作為一種誘導劑分子結合阻遏蛋白,使蛋白構象變化,導致阻遏蛋白與O序列解離、發生轉錄。異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)的作用與異乳糖相同,是一種作用極強的誘導劑,不被細菌代謝而十分穩定,因此被實驗室廣泛應用。

實驗試劑:

1、LB(Luria-Bertani)培養基:酵母膏(Yeast extract)5g 、蛋白胨(Peptone) 10g 、NaCl 10g 、瓊脂(Agar) 1-2% 、蒸餾水(Distilled water) 1000ml 、pH 7.0。

2、IPTG 貯備液:2 g IPTG溶于10 mL 蒸餾水中,0 . 22 μm 濾膜過濾除菌,分裝成1 mL /份,-20 ℃ 保存。

3、凝膠電泳加樣緩沖液 :50 mmol / L Tris -CI ( pH 6 . 8 ) 、50 mmol / L DTT、 2 % SDS (電泳級)、 0.1 % 溴酚藍 、10 % 甘油。

 

實驗步驟:

1、用適當的限制性內切核酸酶消化載體DNA和目的基因;

2、按連接步驟連接目的基因和載體,并轉化到轉化DH5α感受態細胞中;

3、分別挑取單菌落接種于5 mL LB ( 0.1 g·L-1 氨芐青霉素)中,37℃培養過夜;

4、以2 %體積比轉接于2 ml LB( 0.1 g·L-1 氨芐青霉素)中,37℃繼續培養2.5 hr,至細菌對數生長期,加0.1 mmol/L IPTG 2 µl誘導3-4 hr,同時設立不加IPTG誘導作為對照; 

5、取上述菌液1 mL,12000 rpm離心10min,收菌沉淀;

6、重懸于冰的100 µl PBS中,加入PMSF至終濃度為10 mmol/L。震蕩器震蕩混勻,加入2×加樣緩沖液,煮沸10 min變性,12,000 rpm離心10 min;

7、分別取誘導前和誘導后的樣品10 µl進行SDS-PAGE電泳分析。

(PS:如果表達載體的原核啟動子為PL 啟動子,則在30 -32 ℃培養數小時,使培養液的OD600達0.4-0.6,迅速使溫度升至42 ℃ 繼續培養3 -5h ;如果表達載體的原核啟動子為tac 等,則37 ℃培養細菌數小時達到對數生長期后加IPTG 至終濃度為1 mmol / L,繼續培養3 -5h)

 

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發布者:山東維真生物科技有限公司
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