細胞復蘇流程與操作注意事項
每次復蘇細胞都手忙腳亂？好不容易復蘇的細胞竟然污染了？
今天教你如何有條不紊地高效復蘇細胞！
細胞復蘇流程
1、從液氮罐中取出凍存細胞，放入37℃水浴鍋中融化，輕柔離心后收集細胞沉淀；
2、緩慢用移液槍吸去上清，加入適量濃度和體積的完全培養基，重懸細胞沉淀，轉移至細胞培養皿或細胞培養瓶；
3、根據細胞培養皿或者培養瓶的體積，補足完全培養基，放入二氧化碳培養箱中培養觀察。
操作中的注意事項
（一）、小心取出凍存管
許多小型液氮罐的設計是將細胞凍存在帶蓋的提籃中，提籃會浸沒在液氮中。由于提籃中沒有孔格的劃分，細胞凍存管無法擺放整齊。取用細胞時候，實驗人員經常需要逐一查看，尋找計劃復蘇的細胞。此過程耗時過久，可能會導致其他凍存管內的細胞受損。
一般大型液氮罐會配置成列的凍存架和細胞存儲盒，取出凍存架和放回都需要平穩小心處理，避免帶出大量液氮。罐內液氮較多時，可適當在罐口附近停留，等大部分液氮回流后再拎出。
注意
（二）、快速融化待復蘇細胞
當找到準備復蘇的凍存管后，不要著急放入水浴鍋，先檢查封口膜是否完整，如果貼了醫用膠布，膠布是否有破損？因為一旦凍存管中有液氮流入，直接放入水浴鍋中，管內壓力驟升，可能導致凍存管炸裂，危及實驗人員。
復蘇細胞的核心技術，簡而言之就是快融。從液氮罐中取出的細胞，需及時放入37℃水浴鍋，進行快速融化，期間需不停地輕柔搖晃凍存管。最好在兩分鐘內完全融化細胞。出于衛生考慮，有些細胞房沒有水浴鍋，所以很多復蘇操作，需要在不同實驗室進行。如果兩個實驗室距離較遠，且實驗室室溫較高，可提前準備一只干凈的燒杯，裝入37℃的水作中間緩沖。
注意
（三）、輕柔收集已復蘇細胞
收集細胞前，要將所用培養基提前配制預熱并擺放整齊，避免現用現配耽誤復蘇進程，讓剛復蘇的細胞及時接觸正常的生長環境。若凍存液中存在DMSO，請根據所用細胞對其敏感的程度，判斷要不要離心棄除。
剛復蘇的細胞狀態比較脆弱，應避免多次吹打和離心。比如原代細胞在復蘇融化后，盡量不要進行離心操作，直接補足培養基，使細胞分散均勻，等3-6小時，細胞貼壁后，進行換液處理。此方式也適用于其他凍存狀態一般的細胞。
（四）、培養前，計數&活力檢測
復蘇過程中，細胞計數必不可少。原則上，凍存前和復蘇后，都需要對細胞進行計數和活率分析，判別凍存的效果和細胞復蘇后的狀態。
2018年9月，美國藥典（USP-NF）出臺了關于細胞凍存相關政策并明確指出，臺盼藍不能很好地識別剛復蘇的細胞（細胞的種類和臺盼藍的濃度不同，對染色結果都有較大的影響），建議使用兩種以上的方法進行細胞計數，如結合熒光染色計數法。
瑞沃德C100自動細胞計數儀 
內置雙通道熒光柱（紅綠，紅藍，綠藍），可疊加兩種熒光結果，完成復雜的細胞樣品分析，AO/PI染色，一鍵計數便知結果。讓操作更簡易，計數更精準圖片
今天教你如何有條不紊地高效復蘇細胞！
細胞復蘇流程
1、從液氮罐中取出凍存細胞，放入37℃水浴鍋中融化，輕柔離心后收集細胞沉淀；
2、緩慢用移液槍吸去上清，加入適量濃度和體積的完全培養基，重懸細胞沉淀，轉移至細胞培養皿或細胞培養瓶；
3、根據細胞培養皿或者培養瓶的體積，補足完全培養基，放入二氧化碳培養箱中培養觀察。
操作中的注意事項
（一）、小心取出凍存管
許多小型液氮罐的設計是將細胞凍存在帶蓋的提籃中，提籃會浸沒在液氮中。由于提籃中沒有孔格的劃分，細胞凍存管無法擺放整齊。取用細胞時候，實驗人員經常需要逐一查看，尋找計劃復蘇的細胞。此過程耗時過久，可能會導致其他凍存管內的細胞受損。
一般大型液氮罐會配置成列的凍存架和細胞存儲盒，取出凍存架和放回都需要平穩小心處理，避免帶出大量液氮。罐內液氮較多時，可適當在罐口附近停留，等大部分液氮回流后再拎出。
注意
- 液氮在室溫下會快速氣化吸熱，濺到皮膚或者眼睛上會燙傷。從液氮罐中取細胞時，需要做好防護工作——戴好厚手套和護目鏡。
- 不要將凍存管丟入液氮罐，以防液氮濺出。
（二）、快速融化待復蘇細胞
當找到準備復蘇的凍存管后，不要著急放入水浴鍋，先檢查封口膜是否完整，如果貼了醫用膠布，膠布是否有破損？因為一旦凍存管中有液氮流入，直接放入水浴鍋中，管內壓力驟升，可能導致凍存管炸裂，危及實驗人員。
復蘇細胞的核心技術，簡而言之就是快融。從液氮罐中取出的細胞，需及時放入37℃水浴鍋，進行快速融化，期間需不停地輕柔搖晃凍存管。最好在兩分鐘內完全融化細胞。出于衛生考慮，有些細胞房沒有水浴鍋，所以很多復蘇操作，需要在不同實驗室進行。如果兩個實驗室距離較遠，且實驗室室溫較高，可提前準備一只干凈的燒杯，裝入37℃的水作中間緩沖。
注意
- 融化中不要讓水浴鍋中的水，流入凍存管中造成污染。
- 復蘇過程中要格外注重無菌操作，經水浴鍋融化后，需對凍存管消毒。最好同時更換手套和口罩，全程避免移液器接觸管口及管壁。可以將凍存管放入無菌一次性PE手套中，再放入水中融化，避免污染也方便操作。
（三）、輕柔收集已復蘇細胞
收集細胞前，要將所用培養基提前配制預熱并擺放整齊，避免現用現配耽誤復蘇進程，讓剛復蘇的細胞及時接觸正常的生長環境。若凍存液中存在DMSO，請根據所用細胞對其敏感的程度，判斷要不要離心棄除。
剛復蘇的細胞狀態比較脆弱，應避免多次吹打和離心。比如原代細胞在復蘇融化后，盡量不要進行離心操作，直接補足培養基，使細胞分散均勻，等3-6小時，細胞貼壁后，進行換液處理。此方式也適用于其他凍存狀態一般的細胞。
（四）、培養前，計數&活力檢測
復蘇過程中，細胞計數必不可少。原則上，凍存前和復蘇后，都需要對細胞進行計數和活率分析，判別凍存的效果和細胞復蘇后的狀態。
2018年9月，美國藥典（USP-NF）出臺了關于細胞凍存相關政策并明確指出，臺盼藍不能很好地識別剛復蘇的細胞（細胞的種類和臺盼藍的濃度不同，對染色結果都有較大的影響），建議使用兩種以上的方法進行細胞計數，如結合熒光染色計數法。
瑞沃德C100自動細胞計數儀
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