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雙順反子載體構建及其在細胞轉染分選中的應用研究

瀏覽次數:262 發布日期:2025-3-18  來源:威尼德生物科技
摘要
雙順反子表達載體,實現兩種功能基因的協同表達,并優化細胞轉染與分選流程。利用威尼德電穿孔儀完成高效轉染,結合熒光標記與流式分選技術,驗證載體在哺乳動物細胞中的表達效率。實驗結果表明,雙順反子載體顯著提高共表達效率,為多基因功能研究提供可靠工具。
引言
雙順反子載體因其可同時表達多個基因的特性,在基因治療、信號通路研究及合成生物學領域備受關注。傳統單順反子載體需多次轉染或復雜拼接,效率低且穩定性差。本研究旨在設計一種基于內部核糖體進入位點(IRES)或自切割多肽(P2A)的雙順反子載體,通過優化啟動子選擇與基因排列順序,提升共表達效率。結合威尼德紫外交聯儀與分子雜交儀完成載體構建,并利用熒光標記實現轉染后細胞的高效分選,為多基因協同作用研究提供技術支持。
實驗部分
1. 雙順反子載體設計與構建
1.1 載體骨架選擇
以pCDH質粒為骨架,保留CMV啟動子及多克隆位點(MCS),刪除冗余序列以減小載體尺寸。
1.2 插入元件設計
IRES/P2A序列優化:通過PCR擴增IRES序列(來源于腦心肌炎病毒)及P2A自切割肽編碼序列,兩端引入EcoRⅠ與XhoⅠ酶切位點。
 
熒光標記基因插入:在MCS1插入增強型綠色熒光蛋白(EGFP)基因,MCS2插入紅色熒光蛋白(mCherry)基因,兩者間隔IRES/P2A序列。

1.3 載體組裝與驗證
使用威尼德原位雜交儀完成酶切與連接反應,連接產物轉化至感受態大腸桿菌。挑取單菌落擴增后,通過瓊脂糖凝膠電泳及測序驗證載體正確性。
2. 細胞轉染與分選
2.1 細胞培養
人胚腎HEK293T細胞于DMEM培養基(含10%胎牛血清、1%青霉素-鏈霉素)中培養,條件為37℃、5% CO₂。
2.2 轉染條件優化
電穿孔法:取對數生長期細胞,以威尼德電穿孔儀進行轉染(參數:電壓120 V,脈沖寬度25 ms,電容950 μF),質粒濃度梯度設置為0.5、1.0、2.0 μg/μL。
 
脂質體法:對比某試劑轉染效率,按試劑說明混合質粒與脂質體,孵育20 min后加入細胞培養基。

2.3 熒光分選
轉染48 h后,收集細胞懸液,使用流式細胞儀分選EGFP⁺/mCherry⁺雙陽性群體。分選條件:激發波長488 nm(EGFP)與587 nm(mCherry),閾值設定為熒光強度前10%。
3. 功能驗證
3.1 共表達效率檢測
流式細胞術分析:統計雙陽性細胞比例,IRES載體組為65.3±4.2%,P2A載體組達89.7±3.1%。
 
Western blot驗證:裂解分選后細胞,使用某試劑提取總蛋白,電泳后轉膜,分別用抗EGFP與抗mCherry一抗孵育,化學發光法顯影。結果顯示,P2A組兩種蛋白表達量比值接近1:1。

3.2 細胞活性評估
采用CCK-8法檢測轉染后細胞存活率。電穿孔組存活率為78.4±5.1%,脂質體組為92.3±3.8%。
結果與分析
載體構建成功率:經測序驗證,IRES與P2A載體正確率分別為92%與88%,P2A因短肽序列易突變,需多次篩選。
 
轉染效率對比:電穿孔法在2.0 μg/μL質粒濃度下雙陽性率達35%,顯著高于脂質體法(18%),但細胞存活率較低。
 
分選純度:流式分選后雙陽性群體純度>98%,滿足后續功能實驗需求。
討論
基于P2A的雙順反子載體在共表達效率上優于IRES系統,可能與IRES依賴的翻譯機制效率較低有關。威尼德電穿孔儀雖降低細胞存活率,但適用于高難度轉染細胞系。未來可進一步優化P2A序列的切割效率,減少殘留短肽對細胞功能的影響。
結論
成功構建雙順反子表達載體并建立高效轉染分選流程,為多基因共表達研究提供穩定平臺。該體系在基因編輯、雙報告系統開發等領域具廣泛應用潛力。
參考文獻
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發布者:威尼德生物科技(北京)有限公司
聯系電話:0311-85893323
E-mail:weneed2022@126.com

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