1、 原理及用途
本試劑盒采用間接競爭ELISA方法，檢測禽類組織、蜂蜜等樣本中的泰樂菌素含量。試劑盒由預包被偶聯抗原的酶標板、辣根酶標記物、抗體、標準品及其他配套試劑組成。檢測時，加入標準品或樣品溶液，樣本中的泰樂菌素和酶標板上預包被偶聯抗原競爭抗泰樂菌素抗體，再與酶標記物形成抗原抗體復合物，用TMB底物顯色，樣本吸光度值與其泰樂菌素含量成負相關，與標準曲線比較乘以樣本稀釋倍數即可得出樣本中泰樂菌素的殘留量。

2、 技術指標
2.1 試劑盒靈敏度：0.5ppb(ng/ml)
2.2 反應模式：25℃，30min～30min～15min
2.3 檢測下限：
禽組織…………………………1ppb
蜂蜜…………………………0.5ppb
禽蛋、牛奶…………………25ppb
2.4 交叉反應率：
泰樂菌素 ………………………100%
紅霉素………………………… 1%
與其他大環內酯類藥物交叉反應小于1%
 2.5 樣本回收率：
組織…………………………………85±10%
蜂蜜、禽蛋、牛奶…………………85±15%

3、 試劑盒組成
酶標板……………………………96孔
標準液：各1ml
0ppb、0.5ppb、1.5 ppb、4.5ppb、13.5ppb、40.5ppb
酶標記物（紅蓋）…………………11ml
抗體工作液（藍蓋）…………………5.5ml
底物液A（白蓋）……………………6ml
底物液B（黑蓋）……………………6ml
終止液（黃蓋）………………………6ml
2×復溶液（黃蓋）…………………50ml
20×濃縮洗滌液（白蓋）……………40ml
說明書…………………………………1份
蓋板膜…………………………………1張
自封袋…………………………………1個

4、 需要的器材和試劑
4.1 儀器：酶標儀、打印機、均質器 、振蕩器、氮氣吹干裝置、離心機、刻度移液管、天平（感量0.01g）
4.2 微量移液器：單道20µl-200µl，100µl-1000µl、多道300µl
4.3 試劑：NaOH、甲醇、濃HCl、乙腈、三氯甲烷、正己烷

5、 樣本前處理
5.1 樣本處理前須知：
實驗器具必須潔凈并使用一次性吸頭，以避免污染干擾實驗結果。
5.2 配液：
樣本前處理需配制：
配液1：0.1M  NaOH
0.4g NaOH 加去離子水混勻溶解，定容至100ml。
配液2：0.01M  NaOH
0.4g NaOH 加去離子水混勻溶解，定容至1L。
配液3：0.1M  HCL
    8.6mL濃HCL加去離子水混勻，定容至1L。
配液4：樣本提取液（乙腈-0.1M HCl）—甲醇溶液
取乙腈84ml先加入0.1M HCl 16ml混勻后，再加入18ml甲醇混勻。
配液5：復溶液
2×復溶液用去離子水2倍稀釋（1份2×復溶液加1份去離子水）
配液6：工作洗滌液
    將濃縮洗滌液20倍稀釋(1份洗滌液加19份去離子水)。
5.3.1 禽組織處理方法 
1） 稱取均質樣本2±0.05g于50ml離心管中，加入8ml樣本提取液，用振蕩器振蕩5分鐘；4000轉/分以上,室溫離心10分鐘；
2） 取上清液2ml，加入0.1M NaOH溶液1ml,混合后加入 3ml三氯甲烷萃取，振蕩器上振蕩5分鐘；4000轉/分以上，室溫離心10分鐘。
3）去除上層相，取下層全部有機相至干凈玻璃試管中，于56℃水浴下氮氣/空氣吹干；
4） 用1ml稀釋后的復溶液溶解干燥后的殘留物，混合30s；
5） 取50ul用于分析。
樣本稀釋倍數：2        檢測下限：1ppb
5.3.2 蜂蜜處理方法
1）稱取1±0.05g樣本于50ml離心管中，加2ml去離子水渦動2分鐘使其溶解；
2）再加入10ml三氯甲烷上下振蕩5分鐘，4000轉/分，室溫離心10分鐘。
3） 去除上層相，取下層全部有機相至干凈玻璃試管中，于56℃水浴下氮氣或空氣吹干；
4） 用1ml稀釋后的復溶液溶解干燥后的殘留物，混合30s；
5） 取50ul用于分析。
樣本稀釋倍數：1      檢測下限：0.5ppb
5.3.3 禽蛋處理方法
1） 將禽蛋打破去皮勻漿后取1g±0.05g于15ml離心管中，加入0.01M NaOH 4ml，振蕩2分鐘，室溫4000r/分離心10分鐘；
2） 取上層液體2ml于15ml離心管中，加入4ml正己烷，振蕩2分鐘，室溫4000r/分離心10分鐘；
3） 去除上層正己烷，小心穿過中間層淺黃色果凍狀物質取下層清液0.1ml于1.5ml離心管中，再加入0.9ml稀釋后的復溶液，振蕩混勻30s,取50ul分析。
樣本稀釋倍數：50      檢測下限：25ppb
5.3.4 牛奶處理方法
1）取0.5ml牛奶于15ml離心管中，加入0.01M NaOH 2ml，振蕩2分鐘，室溫4000r/分離心10分鐘；
2）取上層液體1ml于15ml離心管中，加入2ml正己烷，振蕩2分鐘，室溫4000r/分離心10分鐘；
3）去除上層正己烷，小心穿過中間層果凍狀物質取下層清液0.1ml于1.5ml離心管中，再加入0.9ml稀釋后的復溶液，振蕩混勻30s,取50ul分析。
樣本稀釋倍數：50      檢測下限：25ppb 

6、 酶聯免疫試驗步驟
將所需試劑從4℃冷藏環境中取出，置于室溫平衡30min以上, 洗滌液冷藏時可能會有結晶需恢復到室溫以充分溶解，每種液體試劑使用前均須搖勻。取出需要數量的微孔板及框架，將不用的微孔板放入自封袋，保存于2-8℃。
6.1 編    號：將樣本和標準品對應微孔按序編號，每個樣本和標準品做2孔平行，并記錄標準孔和樣本孔所在的位置。
6.2 加樣反應：加標準品或樣本50µl/孔到各自的微孔中，然后加抗體工作液50µl/孔，輕輕振蕩5秒混勻，25℃避光反應30分鐘。
6.3 洗    滌：小心揭開蓋板膜，甩去孔內液體，每孔加350ul工作洗滌液，靜置30秒后棄去，重復洗滌5次，最后一次拍干。（用吸水紙拍干，拍干后未被清除的氣泡可用干凈的槍頭刺破）。
6.4 加酶反應：加酶標記物100µl/孔，25℃避光反應30分鐘。
6.5 洗    滌：同上
6.6 顯    色：加底物液A 50µl/孔，再加底物液B 50µl/孔，輕輕振蕩5秒混勻，25℃避光顯色15分鐘（若藍色過淺，可適當延長反應時間）。
6.7 終    止：加終止液50µl/孔，輕輕振蕩混勻，終止反應。
6.8 測吸光值：用酶標儀于450nm處測定每孔吸光度值（建議用雙波長450/630nm）。測定應在終止反應后10分鐘內完成。

7、 結果分析
7.1 百分吸光率的計算
    標準液或樣本的百分吸光率等于標準液或樣本的百分吸光度值的平均值（雙孔）除以第一個標準液（0ppb）的吸光度值，再乘以100%，即

百分吸光度值（%）＝	A	×100%
	A0

A—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值
A0—0ppb標準溶液的平均吸光度值
7.2 標準曲線的繪制與計算
以標準液百分吸光率為縱坐標，對應的標準液濃度（ppb）的對數為橫坐標，繪制標準液的半對數曲線圖。將樣本的百分吸光率代入標準曲線中，從標準曲線上讀出樣本所對應的濃度，乘以其對應的稀釋倍數即為樣本中待測物的實際濃度。
若利用試劑盒專業分析軟件進行計算，更便于大量樣本的準確、快速分析。（歡迎來電索取）

8、 注意事項
8.1 室溫低于25℃或試劑及樣本沒有回到室溫（25℃）會導致所有標準的OD值偏低。
8.2 在洗板過程中如果出現板孔干燥的情況，則會出現標準曲線不成線性，重復性不好的現象。所以洗板拍干后應立即進行下一步操作。
8.3 混合要均勻，洗板要徹底，在ELISA分析中的再現性，很大程度上取決于洗板的一致性。
8.4 在所有孵育過程中，用蓋板膜封住微孔板，避免光線照射。
8.5 不要使用過了有效期的試劑盒，不要交換使用不同批號試劑盒中的試劑。
8.6 顯色液若有任何顏色表明變質，應當棄之。0標準的吸光度值小于0.5個單位（A450nm< 0.5 ）時，表示試劑可能變質。
8.7 反應終止液有腐蝕性，避免接觸皮膚。           

9、 貯藏及保存期
儲藏條件：試劑盒于2-8℃保存，避免冷凍。
保 質 期：該產品有效期為1年，生產日期見包裝盒。