使用活細胞成像儀檢測細胞倍增時間
摘要：
細胞倍增時間是指細胞群體從初始數量翻倍所需的時間。這個指標在細胞生物學和細胞治療領域非常重要，因為它可以幫助評估細胞的生長速率和健康狀況。
正文：
在細胞生物學與細胞治療的廣闊領域，細胞倍增時間如同一把鑰匙，解鎖著細胞生長速率與健康狀態的奧秘。
定義：細胞倍增時間是指細胞群體從初始數量翻倍所需的時間。它是衡量細胞增殖能力的重要參數。
影響因素：細胞倍增時間受到多種因素的影響，包括細胞類型、培養條件、營養物質供應、環境因素（如溫度、pH值）、細胞外基質等。
測量方法：細胞倍增時間可以通過多種方法測量，包括細胞計數、DNA含量測量等。
以上是常用的幾種方式，而今天呢，本文推薦一個新方法：使用活細胞成像儀聯合一個在線工具（https://www.doubling-time.com/compute_more.php）用來計算細胞倍增時間。
優點：無需頻繁計數細胞數量，無需手動繪制生長曲線，自動化程度高，僅需依靠成像設備的掃描與分析軟件便可得到客觀的融合度結果，極大的減少人為誤差以及節省研究時間。
圖1. 新方法示例圖
以下則為一項實驗的示例。
細胞系：Hela細胞
處理因素：不同濃度的抗癌藥物Nocodazole（6.625 nM、31.25 nM、62.5 nM、125 nM、250 nM）
成像設備：Celloger® Mini Plus（4X，GFP）
實驗耗材：48孔板
細胞鋪板量：1×104個/孔
熒光染料：CellTox
總拍攝時長：48H
間隔拍攝時長：1H
結果：用不同濃度的Nocodazole處理細胞并進行延時成像，細胞形態呈濃度依賴性變化，在明場視野下觀察到細胞融合度減小，細胞生長曲線圖也呈現同樣的趨勢。
因為高濃度處理組細胞逐漸死亡，后續不再計算高濃度處理組細胞的倍增時間。
未處理組與低濃度處理組的倍增時間分別為：
圖2. 各濃度Nocodazole的明場與熒光視野圖像
（圖像顯示以24h為間隔時間，綠色熒光表示死亡細胞。比例尺，200 μm）
圖3. 細胞隨時間變化的融合率（%）數據圖
圖4. 使用在線工具計算倍增時間過程
告別繁瑣的細胞計數，告別耗時的傳統方法，我們的新方法采用先進的智能圖像捕獲與分析技術，通過追蹤細胞培養過程中的細胞融合度變化，實現細胞倍增時間的快速、精準檢測。這不僅大大提升了科研效率，更確保了數據的準確性和可靠性，為科研工作者提供了前所未有的便利。希望以上的分享能對大家計算倍增時間提供幫助。
細胞倍增時間是指細胞群體從初始數量翻倍所需的時間。這個指標在細胞生物學和細胞治療領域非常重要，因為它可以幫助評估細胞的生長速率和健康狀況。
正文：
在細胞生物學與細胞治療的廣闊領域，細胞倍增時間如同一把鑰匙，解鎖著細胞生長速率與健康狀態的奧秘。
定義：細胞倍增時間是指細胞群體從初始數量翻倍所需的時間。它是衡量細胞增殖能力的重要參數。
影響因素：細胞倍增時間受到多種因素的影響，包括細胞類型、培養條件、營養物質供應、環境因素（如溫度、pH值）、細胞外基質等。
測量方法：細胞倍增時間可以通過多種方法測量，包括細胞計數、DNA含量測量等。
①細胞計數法：
優點：操作簡單，直觀。
缺點：可能會受到人為誤差的影響，不適合大量細胞的計數。
②細胞生長曲線法：
優點：通過繪制細胞數量隨時間變化的曲線，可以準確測量倍增時間。
缺點：需要多次取樣和計數，耗時較長。
③DNA含量測量：
優點：可以通過測量DNA含量來估算細胞數量。
缺點：需要特定的染色劑和設備，可能受到細胞周期階段的影響。
④細胞增殖測定試劑盒：
優點：操作簡便，靈敏度高，如MTT、BrdU等。
缺點：某些試劑可能對細胞有毒性或受到細胞類型和培養條件的限制。
⑤基于圖像的分析：
優點：可以提供細胞形態和分布的詳細信息。
缺點：需要圖像處理軟件和分析技能，可能受到圖像質量的影響。
⑥流式細胞儀分析：
優點：可以同時測量多種細胞特性，如細胞大小、復雜性等。
缺點：需要專門的設備和技術，可能受到細胞碎片的干擾。
優點：操作簡單，直觀。
缺點：可能會受到人為誤差的影響，不適合大量細胞的計數。
②細胞生長曲線法：
優點：通過繪制細胞數量隨時間變化的曲線，可以準確測量倍增時間。
缺點：需要多次取樣和計數，耗時較長。
③DNA含量測量：
優點：可以通過測量DNA含量來估算細胞數量。
缺點：需要特定的染色劑和設備，可能受到細胞周期階段的影響。
④細胞增殖測定試劑盒：
優點：操作簡便，靈敏度高，如MTT、BrdU等。
缺點：某些試劑可能對細胞有毒性或受到細胞類型和培養條件的限制。
⑤基于圖像的分析：
優點：可以提供細胞形態和分布的詳細信息。
缺點：需要圖像處理軟件和分析技能，可能受到圖像質量的影響。
⑥流式細胞儀分析：
優點：可以同時測量多種細胞特性，如細胞大小、復雜性等。
缺點：需要專門的設備和技術，可能受到細胞碎片的干擾。
以上是常用的幾種方式，而今天呢，本文推薦一個新方法：使用活細胞成像儀聯合一個在線工具（https://www.doubling-time.com/compute_more.php）用來計算細胞倍增時間。
優點：無需頻繁計數細胞數量，無需手動繪制生長曲線，自動化程度高，僅需依靠成像設備的掃描與分析軟件便可得到客觀的融合度結果，極大的減少人為誤差以及節省研究時間。
圖1. 新方法示例圖
以下則為一項實驗的示例。
細胞系：Hela細胞
處理因素：不同濃度的抗癌藥物Nocodazole（6.625 nM、31.25 nM、62.5 nM、125 nM、250 nM）
成像設備：Celloger® Mini Plus（4X，GFP）
實驗耗材：48孔板
細胞鋪板量：1×104個/孔
熒光染料：CellTox
總拍攝時長：48H
間隔拍攝時長：1H
結果：用不同濃度的Nocodazole處理細胞并進行延時成像，細胞形態呈濃度依賴性變化，在明場視野下觀察到細胞融合度減小，細胞生長曲線圖也呈現同樣的趨勢。
因為高濃度處理組細胞逐漸死亡，后續不再計算高濃度處理組細胞的倍增時間。
未處理組與低濃度處理組的倍增時間分別為：
| Drug Concentration（nM） | 0nM | 31.25nM |
| Time（h） | 36.11 | 40.06 |
圖2. 各濃度Nocodazole的明場與熒光視野圖像
（圖像顯示以24h為間隔時間，綠色熒光表示死亡細胞。比例尺，200 μm）
圖3. 細胞隨時間變化的融合率（%）數據圖
圖4. 使用在線工具計算倍增時間過程
告別繁瑣的細胞計數，告別耗時的傳統方法，我們的新方法采用先進的智能圖像捕獲與分析技術，通過追蹤細胞培養過程中的細胞融合度變化，實現細胞倍增時間的快速、精準檢測。這不僅大大提升了科研效率，更確保了數據的準確性和可靠性，為科研工作者提供了前所未有的便利。希望以上的分享能對大家計算倍增時間提供幫助。
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