本試劑盒僅供研究使用。       

使用目的：
本試劑盒用于測定樣本中游離脂肪酸（FFA）的含量。

實驗原理
本試劑盒應用酶聯免疫競爭法測定標本中游離脂肪酸（FFA）水平。用純化的游離脂肪酸（FFA）抗體包被微孔板，制成固相抗體，往包被單抗的微孔中加入游離脂肪酸（FFA），和HRP標記的游離脂肪酸（FFA）抗原，使它們競爭結合，，經過徹底洗滌后加底物TMB顯色。樣本顏色的深淺和樣品中的游離脂肪酸（FFA）的含量呈負相關。用酶標儀在450nm波長下測定吸光度（OD值），通過標準曲線計算樣品中游離脂肪酸（FFA）的含量。  

試劑盒組成

1	30倍濃縮洗滌液	20ml×1瓶	8	標準品S1（200μmol/L）	0.5ml×1瓶
2	酶標試劑	6ml×1瓶		標準品S2（100μmol/L）	0.5ml×1瓶
3	酶標包被板	12孔×8條		標準品S3（50μmol/L）	0.5ml×1瓶
4	顯色劑A液	6ml×1瓶		標準品S4（25μmol/L）	0.5ml×1瓶
5	顯色劑B液	6ml×1瓶		標準品S5（12.5μmol/L）	0.5ml×1瓶
6	終止液	6ml×1/瓶	9	說明書	1份
7	樣品稀釋液	6ml×1/瓶	10	封板膜	2張

 
標本要求 
1．標本處理：（1）水樣   采集后經 -20℃反復凍融三次，再經玻璃纖維過濾后，備查
（2）組織   樣品用丁醇：甲醇：水(5：25：70 V：V：V)抽提，或按相關文獻提取進行，提取后應盡快進行實驗。若不能馬上進行試驗，可將標本放于-20℃保存，備查
2．不能檢測含NaN3的樣品，因NaN3抑制辣根過氧化物酶的（HRP）活性。

操作步驟

• 加樣：分別設標準孔、空白孔（空白對照孔不加樣品及酶標試劑，其余各步操作相同）、待測樣品孔。在酶標包被板上標準孔中加50微升，待測樣品孔中先加樣品稀釋液40μl，然后再加待測樣品10μl（樣品最終稀釋度為5倍）。加樣將樣品加于酶標板孔底部，盡量不觸及孔壁，輕輕晃動混勻。
• 加酶：每孔加入酶標試劑50μl，空白孔除外。
• 溫育：用封板膜封板后置37℃溫育60分鐘。   
• 配液：將30倍濃縮洗滌液用蒸餾水30倍稀釋后備用
• 洗滌：小心揭掉封板膜，棄去液體，甩干，每孔加滿洗滌液，靜置30秒后棄去，如此重復5次，拍干。
• 顯色：每孔先加入顯色劑A50μl，再加入顯色劑B50μl，輕輕震蕩混勻，37℃避光顯色15分鐘.
• 終止：每孔加終止液50μl，終止反應（此時藍色立轉黃色）。
• 測定：以空白孔調零，450nm波長依序測量各孔的吸光度（OD值）。 測定應在加終止液后15分鐘以內進行。

 
計算
以標準物的濃度為橫坐標，OD值為縱坐標，在坐標紙上繪出標準曲線，根據樣品的OD值由標準曲線查出相應的濃度；再乘以稀釋倍數；或用標準物的濃度與OD值計算出標準曲線的直線回歸方程式，將樣品的OD值代入方程式，計算出樣品濃度，再乘以稀釋倍數，即為樣品的實際濃度。

注意事項
1．試劑盒從冷藏環境中取出應在室溫平衡15-30分鐘后方可使用，酶標包被板開封后如未用完，板條應裝入密封袋中保存。
2．濃洗滌液可能會有結晶析出，稀釋時可在水浴中加溫助溶，洗滌時不影響結果。
3．各步加樣均應使用加樣器，并經常校對其準確性，以避免試驗誤差。一次加樣時間最好控制在5分鐘內，如標本數量多，推薦使用排槍加樣。
4．請每次測定的同時做標準曲線，最好做復孔。如標本中待測物質含量過高（樣本OD值大于標準品孔第一孔的OD值），請先用樣品稀釋液稀釋一定倍數（n倍）后再測定，計算時請最后乘以總稀釋倍數（×n×5）。
5．封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。
6．底物請避光保存。
7．嚴格按照說明書的操作進行，試驗結果判定必須以酶標儀讀數為準.
8．所有樣品，洗滌液和各種廢棄物都應按傳染物處理。
9．本試劑不同批號組分不得混用。

檢測范圍：
5μmol/L - 250μmol/L

規格：
96份/盒

保存條件及有效期
1．試劑盒保存：2-8℃。
2．有效期：6個月