細胞轉(zhuǎn)染是指利用各種物理、化學、生物學方法,將外源分子(DNA、RNA 、mRNA等)導(dǎo)入真核細胞內(nèi),來改變細胞的特性,從而達到改造細胞的目的,它是實現(xiàn)細胞基因功能和蛋白質(zhì)表達研究的重要工具。
根據(jù)導(dǎo)入的外源分子存在于宿主細胞的時間長短,細胞轉(zhuǎn)染可以分為瞬轉(zhuǎn)和穩(wěn)轉(zhuǎn)。根據(jù)轉(zhuǎn)染方式又可以分為:物理轉(zhuǎn)染法、化學轉(zhuǎn)染法及生物轉(zhuǎn)染法。
物理轉(zhuǎn)染法:電穿孔法、顯微注射法、基因槍法
化學轉(zhuǎn)染法:磷酸鈣共沉淀法、陽離子聚合物法、陽離子脂質(zhì)體法
生物轉(zhuǎn)染法:病毒介導(dǎo)法
對于了解或做過細胞轉(zhuǎn)染實驗的研究人員,想必上述方法大家都是非常熟悉的,我們也總結(jié)了這些方法的原理以及優(yōu)缺點比較(表1),幫助大家找到適合自己實驗的細胞轉(zhuǎn)染方法。
轉(zhuǎn)染方式 | 具體方法 | 原理 | 優(yōu)點 | 缺點 | 應(yīng)用 |
物理法 | 電轉(zhuǎn) | 通過脈沖電流在細胞膜上打孔將外源分子導(dǎo)入細胞內(nèi) | •操作簡單,可迅速轉(zhuǎn)染大量細胞 •轉(zhuǎn)染效率高 •無需載體 •適用于各種細胞 •體內(nèi)體外均可實現(xiàn)基因轉(zhuǎn)移 •結(jié)果可重復(fù) |
•需要儀器 •細胞的死亡率高 |
瞬轉(zhuǎn)和穩(wěn)轉(zhuǎn) |
顯微注射 | 利用顯微鏡,通過微量注射針將外源基因片段注射到細胞中 | •靶向性高,可實現(xiàn)單細胞轉(zhuǎn)染 •適用于各種細胞 •無需載體 |
•需要儀器 •操作困難 •轉(zhuǎn)染細胞數(shù)有限 •細胞的死亡率高 •基因表達不穩(wěn)定 |
瞬轉(zhuǎn)和穩(wěn)轉(zhuǎn) | |
基因槍 | 在強電場或高壓壓縮氣體驅(qū)動下使微粒子加速運動從而進入細胞和組織中 | •適用于各種細胞 •無需載體 |
•需要儀器 •需要制備微粒 •細胞的死亡率高 •轉(zhuǎn)染效率低 |
瞬轉(zhuǎn)和穩(wěn)轉(zhuǎn) | |
化學法 | 陽離子脂質(zhì)體法 | 帶正電荷的DNA——陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物,被表面帶負電荷的細胞內(nèi)吞 | •快速簡單 •結(jié)果可重復(fù) •適用于各種細胞 •無需載體 |
•轉(zhuǎn)染效率受到細胞類型影響 •轉(zhuǎn)染時要除血清 •有細胞毒性 |
瞬轉(zhuǎn)和穩(wěn)轉(zhuǎn) |
陽離子聚合物法 | 帶正電的聚合物——DNA復(fù)合物,被表面帶負電荷的細胞內(nèi)吞 | •快速簡單 •結(jié)果可重復(fù) •適用于各種細胞 •無需載體 |
•轉(zhuǎn)染效率受到細胞類型影響 •有細胞毒性 •有些不可生物降解 |
瞬轉(zhuǎn) | |
磷酸鈣共沉淀法 | 磷酸鈣-DNA復(fù)合物粘附到細胞膜并通過胞飲作用進入靶細胞 | •成本低 •操作簡單 •無需載體 |
•結(jié)果可重復(fù)性差 •不適用于原代細胞 •有細胞毒性 •不適用于體內(nèi)基因轉(zhuǎn)移 |
瞬轉(zhuǎn)和穩(wěn)轉(zhuǎn) | |
生物法 | 病毒介導(dǎo)法 | 通過侵染,將外源基因有效地整合到宿主染色體上 | •轉(zhuǎn)染率較高 •適用于難轉(zhuǎn)染的細胞 •細胞毒性低 |
•需要病毒載體 •有生物安全問題 •插入片段大小有限 •操作周期長 |
瞬轉(zhuǎn)和穩(wěn)轉(zhuǎn) |
表1:三種轉(zhuǎn)染方式的原理、優(yōu)缺點和應(yīng)用
通過各種轉(zhuǎn)染方法的比較,我們發(fā)現(xiàn)電穿孔法,也就是電轉(zhuǎn),無論是在操作方法、適用范圍以及轉(zhuǎn)染效率等方面,都有著很大的優(yōu)勢。而現(xiàn)實亦是如此,由于電轉(zhuǎn)的高效、低內(nèi)毒、操作簡單,并且可以瞬時和穩(wěn)定地表達外源基因,因此常常用于科研領(lǐng)域的新藥開發(fā)、癌癥研究、免疫學研究等。
傳統(tǒng)的電轉(zhuǎn)實驗操作流程,一般先利用電轉(zhuǎn)緩沖液重懸細胞,然后對含有核酸、緩沖液、細胞的混合物給予合適的電脈沖,電脈沖會在細胞膜上形成電勢差,從而誘導(dǎo)產(chǎn)生暫時的孔使核酸進入細胞,最后將細胞返回到生長培養(yǎng)基中,使其慢慢恢復(fù),檢測基因表達或沉默情況。在傳統(tǒng)電轉(zhuǎn)實驗中,細胞死亡率高,并且原代細胞或干細胞的轉(zhuǎn)染效率較低?紤]到傳統(tǒng)電轉(zhuǎn)的弊端,于是科研人員致力于開發(fā)更高效的電轉(zhuǎn)技術(shù),電轉(zhuǎn)儀就在這時候橫空出世了,目前市面上主流使用的就是Nucleofector™電轉(zhuǎn)儀。
1998年,市場上第一個有效的、非病毒介導(dǎo)的Nucleofector™ 技術(shù)開發(fā)成功,可高效轉(zhuǎn)染傳統(tǒng)方法難以轉(zhuǎn)染的原代細胞、干細胞、神經(jīng)元和細胞系,為疾病研究治療如基因治療、免疫治療和干細胞生成開發(fā)帶來了新的機遇。Nucleofector™技術(shù)是Lonza公司的專利創(chuàng)新技術(shù),利用電擊在細胞膜上開個小孔,綜合各種特定細胞轉(zhuǎn)染程序與轉(zhuǎn)染液的作用,核酸底物不僅可以進入細胞質(zhì),還可直接通過核膜進入細胞核。相較于傳統(tǒng)電轉(zhuǎn)技術(shù),Nucleofector™技術(shù)的細胞轉(zhuǎn)染率可達99%,且實現(xiàn)轉(zhuǎn)染不依賴于細胞的分裂。
實驗操作步驟
1.收獲目的細胞:按照轉(zhuǎn)染需要的細胞量進行計數(shù),如20 µl電轉(zhuǎn)體系可轉(zhuǎn)1x104-1x106個細胞,100 µl電轉(zhuǎn)體系可轉(zhuǎn)1x105-1x107個細胞;
2.混勻:低速離心,盡量吸去細胞上清,用電轉(zhuǎn)Buffer重懸細胞,加入轉(zhuǎn)染杯,加入準備好的質(zhì)粒DNA,輕輕混勻,避免產(chǎn)生氣泡;
3.電轉(zhuǎn):將轉(zhuǎn)染杯放入轉(zhuǎn)染儀,按鍵選擇相應(yīng)程序,按"start"鍵開始轉(zhuǎn)染,等待指示圖標顯示綠色“+”號,即可完成實驗;
4.培養(yǎng):吸去電轉(zhuǎn)Buffer,加入預(yù)熱好的培養(yǎng)基,將細胞轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中繼續(xù)培養(yǎng)。若轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒為試劑盒內(nèi)的陽性對照質(zhì)粒,一般在實驗結(jié)束后7-8h內(nèi)可在熒光顯微鏡下觀察到實驗結(jié)果。