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METTL3介導的m6A甲基化譜調控肌肉干細胞成肌細胞狀態轉換

瀏覽次數:592 發布日期:2023-4-12  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
2020年9月29日,《Cell Death Discovery》(IF: 7.109)雜志發表了題為“A defined N6-methyladenosine (m6A) profile conferred by METTL3 regulates muscle stem cell/myoblast state transitions”的研究論文,研究通過MeRIP-seq(m6A-seq)等實驗鑒定了通過Mettl3在mRNA上的m6A沉積是否是體外和體內肌肉特異性成體干細胞(MuSC)/成肌細胞狀態的調控因子。

標題:A defined N6-methyladenosine (m6A) profile conferred by METTL3 regulates muscle stem cell/myoblast state transitions(METTL3介導的m6A甲基化譜調控肌肉干細胞成肌細胞狀態轉換)
時間:2020.9.29
期刊:Cell Death Discovery
影響因子:IF 7.109
技術平臺:MeRIP-seq、RNA-seq、m6A液相色譜/質譜(LC-MS)、RT-PCR等
 
項目設計
(1)樣本選取:
Cg-Pax7 tm1(Cre / ERT2)Gaka / J小鼠(JAX:017763)與B6N.129S6-Gt(ROSA)26Sor tm1(CAG-tdTomato *,-EGFP)/ Ees / J小鼠雜交( JAX:005304)產生小樹:Pax7 CreERT2;Rosa26 nTnG(以下稱為Pax7 nTnG)。Pax7 nTnG小鼠用于所有肌肉損傷實驗。普遍表達熒光素酶的小鼠FVB-TG(CAG-luc, -GFP)L2G85Chco / J(JAX:008450, CMV-luc小鼠)被用于分離供體細胞進行移植實驗并被移植到免疫缺陷的NSG小鼠中(NOD. Cg-Prkdc scid Il2rg tm1Wjl / SzJ,JAX:005557)。

(2)項目設計流程圖:

研究目的
肌肉特異性成體干細胞(MuSCs)為骨骼肌再生所必需。為確保損傷后骨骼肌的有效再生,MuSCs必須經歷從靜止狀態被激活的狀態轉換,從而產生大量增殖的成肌細胞,并繼續進行終末分化,修復或替換受損的肌纖維,或者自我更新以重新填充靜止的細胞群。MUSC/成肌細胞狀態的變化伴隨著其轉錄譜的顯著動態變化。此前研究已報道鑒定了成體干細胞系統中由m6A writers METTL3介導最豐富的內部mRNA修飾N6-甲基腺苷(m6A)發生了變化,并通過改變這些細胞的轉錄譜來調控細胞狀態轉換。本研究目的是確定通過METTL3的m6A修飾沉積是否在體外和體內對MUSC/成肌細胞狀態轉換起調節作用。研究使用液相色譜/質譜(LC-MS)分析表明在體內骨骼肌再生的早期階段,整體m6A水平增加;在體外C2C12成肌細胞從增殖狀態轉變為分化狀態時,整體m6A水平下降。使用m6A特異性RNA測序(MeRIP-seq)鑒定了m6A修飾的不同圖譜,區分了增殖狀態和分化狀態的C2C12成肌細胞。RNAi研究表明,降低m6A甲基轉移酶METTL3的活性水平可以降低整體m6A水平,并促進C2C12成肌細胞過早分化。在移植前降低原代小鼠MuSC中的METTL3水平可以增強了其在原代移植時的植入能力,但其連續移植能力缺失。總之,本研究證明了METTL3可以調控MuSCs/成肌細胞中的m6A水平,并調控MuSCs/成肌細胞向不同細胞狀態的轉變。此外本研究為增殖和分化C2C12成肌細胞中的m6A修飾提供了第一個轉錄組圖譜,并揭示了可能調控MuSC/成肌細胞狀態轉換的新的基因。
 
實驗結果
(1)在MuSC從增殖到分化過程中,整體m6A水平下降
圖1:m6A修飾在再生骨骼肌和C2C12成肌細胞中受動態調控

(2)MeRIP-seq揭示了轉錄本特異性m6A修飾豐度的動態變化,但未揭示轉錄本上m6A修飾位點的頻率變化
為了繪制由m6A標記的轉錄組在成肌細胞從增殖轉換到分化時的動態變化,研究在GM和3d DM樣品中進行了MeRIP-seq。MeRIP-seq證實了LC–MS數據,并揭示了在GM(相對于3d DM)樣品中m6A修飾的轉錄本富集。在GM和3d DM樣本中,m6A在轉錄本上的分布相似,最富集在編碼序列和3′區域的邊界區域。因此可以得出結論,m6A富集的整體和轉錄本特異性程序與維持成肌細胞在增殖狀態有關,并且這種作用并非受轉錄本上m6A修飾位點差異驅動。

(3)單個轉錄本水平上的增殖特異性m6A譜的表征
MeRIP-seq分析顯示1607 個m6A peaks代表862個富含GM的特異性基因;通過倍數變化> 1.0(GM / 3d DM)確定RNA-seq數據集中轉錄本表達的增加。MeRIP-seq和RNA-seq數據集之間受影響的分子功能通路的不完全重疊分析表明,GM期間m6A修飾的某些功能結果超出了增強的轉錄本穩定性和/或衰減。
圖2:MeRIP-seq分析將轉錄調控鑒定為C2C12成肌細胞增殖過程中m6A修飾的主要靶點

(4)個體轉錄水平上分化特異性m6A譜的表征
3d DM MeRIP-seq數據集中富集了m6A的轉錄本進行了重復分析,鑒定出573 個m6A peaks與340個特異性基因相關,這些基因在3d DM與GM樣品中顯著富集。PANTHER GO-slim分子功能通路分析顯示,與轉錄調控相關的分子功能通路比GM數據集中的更少。3d DM富集的最主要通路是微管結合(icrotubule binding)。與GM不同的是,MeRIP-seq數據集中鑒定的所有分子功能通路都包含RNA-seq數據集,這表明與GM相比,3d DM中與m6A修飾和轉錄豐度相關性更強。
圖3:MeRIP-seq分析將微管結合鑒定為C2C12成肌細胞分化過程中m6A修飾的主要靶標

(5) Mettl3調控成肌細胞從增殖到分化的過渡
假設由于活性m6A writers Mettl3表達增加,m6A水平在GM樣品中富集。為了模擬再生過程中的MuSC活性,培養C2C12成肌細胞和原代小鼠成肌細胞,然后通過血清限制促使其在體外分化;分化開始后,C2C12成肌細胞(圖4a)和原代小鼠成肌細胞(圖4b)中的Mettl3表達水平顯著下降。
為確定單獨m6A修飾沉積是否足以啟動分化,用靶向Mettl3的siRNA處理C2C12成肌細胞,其成功地降低m6A修飾,而Mettl3敲低會減少細胞計數。還評估了Mettl3敲低對與增殖(Pax7)、早期分化(Myod1)和晚期分化(Myog)相關的MRF影響。Mettl3敲低后Myod1和Myog的基因表達顯著增加,且顯著增加表達eMHC的C2C12成肌細胞數量(eMHC是終末分化標志物),這些數據支持一種模型,在該模型中,增殖的C2C12成肌細胞中的Mettl3敲低可降低m6A修飾的整體水平并導致成肌細胞的過早分化。
圖4:Mettl3敲低促進成肌細胞過早分化


(6)Mettl3基因敲低影響原發性MuSC植入
當在移植前將Mettl3敲低時,移植的MuSC植入和生物發光表達的可能性得到改善。

圖5:Mettl3敲低增強了初次移植后的MuSC植入

參考文獻:
Gheller BJ, Blum JE, Fong EHH, Malysheva OV, Cosgrove BD, Thalacker-Mercer AE. A defined N6-methyladenosine (m6A) profile conferred by METTL3 regulates muscle stem cell/myoblast state transitions. Cell Death Discov. 2020;6(1):95.
發布者:深圳市易基因科技有限公司
聯系電話:0755-28317900
E-mail:wuhuanhuan@e-gene.cn

標簽: RNA甲基化 m6A
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