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qPCR實驗過程中的注意事項和問題處理方法

瀏覽次數:4447 發布日期:2023-1-5  來源:MedChemExpress

首先,幫大家區分一下幾個生物實驗中飄來飄去的“象形”詞——PCR、qPCR、逆轉錄/反轉錄……

PCR (Polymerase Chain Reaction)聚合酶鏈式反應,基于堿基互補配對原則放大擴增特定 DNA 片段的分子生物學技術,即將微量的 DNA 指數增加

qPCR (Quantitative Real-time PCR)實時熒光定量 PCR,一般是 real-time PCR 的簡稱。指在 PCR 反應中,通過熒光化學物質檢測 PCR 循環后的產物總量,反應中需通過內參或外參對特定 DNA 進行定量分析。后續可通過擴增曲線 (Amplification curve) 和熔解曲線分析 (Dissociation curve) 定量結果。

逆轉錄或反轉錄 (Reverse transcription)是指以 RNA 為模板,在逆轉錄酶的作用下,合成 cDNA 的過程,通常所提及的 RT-PCR 或 RT-qPCR 詞中的 RT 便是此意。后續便可以此 cDNA 為模板進行 PCR 或 qPCR 實驗

圖 1. 分子生物學的中心法則

RNA-cDNA-qPCR,是做定量的一個常見實驗流程,即先從目標樣本中提取 RNA,通過逆轉錄酶進行逆轉錄得到單鏈 cDNA,并以此為模板進行 qPCR,大都為驗證某個基因的相對表達量,那如何讓這個過程 “絲絲滑滑” 呢?

 
RNA 的質量很關鍵
 
若想定量數據好,優質 RNA 可是個寶!RNA 提取時的注意事項就不再 balabala 了,得到 RNA 后,對其質量進行檢測分析那可少不了。嚯嚯,下面這兩方面可得好好 “宣講” 一下。
 
濃度和純度
RNA 具有連續的吸光譜,其在 260 nm 處具有最高吸收峰;蛋白在 280 nm 處有最大吸收峰;230 nm 處的吸光度可反映乙醇、GTC、GuHCl、EDTA 等的含量。因此,在 RNA 的質檢參數中,260、280 和 230 nm 下的吸光度分別代表了核酸、蛋白質及有機溶劑等的值。一般情況下,RNA 純度檢測時我們大都只看其在 OD260/OD280 比例中的數值范圍,少量的蛋白、鹽或基因組等污染我們是可以接受的。

(得嘞,RNA,嬌貴嬌貴!包容包容!我懂我懂!)

圖 2. RNA 質量的判斷

■ 完整度評估

mRNA 約占總 RNA 3%rRNA 約占總 RNA 80% 以上。一般可通過凝膠電泳對 RNA (主要是 rRNA) 的完整性進行評估。那如何通過 RNA 的膠圖分析這各種污染 “Bug” 呢?

以真核生物舉例:完整的總 RNA 電泳后會產生 28S、18S、5.8S 的 rRNA 條帶,28S 與 18S 的條帶強度大致比例應為 2:1 (圖 3a)。電泳條帶 5.8S rRNA 出現則表示有輕微降解。RNA 本身就 “矯情”,得 “富養”~,因此在一般實驗中,5.8S 條帶出現很正常,但如果只有這一種條帶且有明顯彌散現象 (圖 3b),后續逆轉錄的話還是建議 “及時止損” 吧!

 

若在 28S 以上出現多余的條帶,還賊亮,gDNA 污染,無疑了 (圖 3b)!若在點樣孔中還有明亮亮的 “釘子戶”,大概率的蛋白污染,可以“定罪了”。

真核生物膠圖的目的條帶為 23S、16S 和 5S,質檢方法參照以上即可。

(如果你跑的膠明顯的干干凈凈、“不染世俗”,小可憐,RNA 提取,再來一遍吧!)

 

圖 3. RNA 凝膠電泳圖。
a. 高質量 RNA;b. gDNA 殘留;c. 蛋白殘留;d. RNA 降解。
 
逆轉錄,這些坑能躲則躲
 

還是以真核生物舉例:RNA 逆轉錄為 cDNA,看似簡單,實則 “心潮澎湃”,屢戰屢敗的實驗汪們已經小心到呼吸頻率都降低了,但各種問題還是奇奇怪怪,而且跨完 “此坑” 又見 “彼坑”。

冷靜冷靜,你能行!戳一戳,往期逆轉錄避坑指南,你想要的答案都在這里 (→RNA 逆轉錄失敗,達咩!)
 
qPCR 十做九“謝”,這些操作你可長點心吧
 
qPCR 到底有多“詭異”,你且看看這些痛苦科研汪的 “表白橋段”:
“實不相瞞,這 qPCR 的 S 曲線一點都不 S,它的腰去哪了?”——沒了!
“一杯敬實驗,一杯敬文章,看完 qPCR 的結果,我不想談戀愛了。”——單著!
“看完我的 Ct 值,我就知道,不用 △△t 了,再愛已經沒有意義了。”——分手!
“師姐,qPCR 都做好多次了,擴增曲線還是亂七八糟,是不是我不配?”——不配!
 

圖 3. 標準擴增曲線 (a) 和溶解曲線 (b)

 

青色等煙雨,而我在等你,關于 qPCR 的一些 “紛紛擾擾”,你且聽我細細說。

 

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