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細胞劃痕實驗的具體步驟

瀏覽次數:3329 發布日期:2022-12-8  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

細胞劃痕實驗是指將細胞培養在培養皿或平板上,待細胞融合后用槍頭或其他硬物在中 央區域畫一條線,這條線內的細胞被機械力去除掉了,然后將細胞繼續培養,觀察細胞向無 細胞的劃痕區域遷移的情況,來判斷細胞的遷移能力。其意義在于:價格低廉,操作簡單, 還有很重要的一點在于細胞外圍環境簡單、單純,容易控制,是腫瘤細胞基本的研究方法。


一、實驗前準備

實驗開始前,將離心管、吸管筒、移液槍、槍頭,直尺等放入無菌超凈工作臺,以紫外 線照射 30min。然后,采用通風機通風 3min。 取出無菌 6 孔板,用黑色記號筆在 6 孔板底部,用直尺比著,均勻的劃橫線,大約每隔 0.5~1cm 一道,橫穿過孔,每孔至少穿過 3 條線。每條黑線的上下緣與劃痕交叉點作為觀察 點,這樣一方面便于觀察另一方面可以一次取多個觀察點,最終可以獲得多個數據。 畫好橫線后,在板上分別做好標記。 取下試劑瓶和離心管上的封口膜,且將每個試劑瓶和離心管擰松,方便后續試驗的操作。


二、細胞準備

取出處于對數生長期的健康細胞,吸掉原來的培養液,用無菌 PBS 清洗細胞。加入 1ml 胰酶消化液消化細胞,顯微鏡下觀察所有細胞完全皺縮變圓后加入完全培養基終止消化。收 集細胞懸液于 15ml 離心管中,800rpm/min 室溫離心 5min。用羅氏 CASY 快速細胞計數及 活率分析儀進行細胞計數,棄去上清,加入培養基重懸細胞。,以每孔 1~4×105 細胞的密度 接種到 6 孔培養板上,在含 10%胎牛血清的 DMEM 培養基中培養一天。具體數量因細胞種 類不同而不同,掌握為過夜能鋪滿。


三、直線劃痕

取出鋪滿六孔板的細胞,用 200ul 槍頭垂直于細胞表面,由孔一端劃向另一端。盡量垂 直于背面的橫線劃痕,槍頭要垂直,不能傾斜。此時可在培養皿的表面清晰看到細胞表面呈 #字形劃痕。


四、PBS 清洗細胞及培養

吸掉舊培養基,用無菌 PBS 洗細胞表面 3 次,去除劃下的細胞,加入含有 1%胎牛血清 的培養基為陰性對照,及含有相應濃度藥物的 1%胎牛血清培養基為藥物刺激組;每組 2 個 復孔。 輕輕搖動六孔板,使藥物與細胞培養液充分混合,放入 37 度,5%C02 培養箱中培養。


五、結果觀察

分別取劃痕 0 小時、24hr、48hr 后觀察不同處理組的痕道寬度。 結果可見:細胞劃痕后 48h 觀察到對照組細胞劃痕寬度恢復約 90%,而藥物抑制組恢 復約 60%。 表明加入藥物后,由于藥物的作用,使細胞遷移受到抑制,而未加入藥物的細胞保持原 有的遷移能力,在 48h 后通過遷移將劃痕掩蓋。


六、注意事項

1、細胞密度 注意細胞生長狀況,選擇適當的細胞接種密度,對不同的細胞要觀察其貼壁率等,保證 培養終止時密度適當。

2、沖洗細胞緩慢輕柔 在用 PBS 緩沖液沖洗時,注意貼壁緩慢加入,以免沖散單層貼壁細胞,影響實驗拍照 結果。

3、低濃度或無血清培養 劃痕 PBS 沖洗后應該加入無血清培養基或者低濃度血清培養基,以排除細胞本身增殖 對實驗的影響。


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