分光光度法 50 管/48 樣
 

注意： 正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定
 

GLS（EC 3.5.1.1）是酰胺基水解酶，催化天冬酰胺水解成谷氨酸和氨，在氮素代謝中具有重要調控作用，尤其是調節游離氨含量和尿素代謝。
 

測定原理：GLS 催化谷氨酰胺水解成 L-谷氨酸和氨，利用奈氏試劑檢測氨增加的速率，即可計算其酶活性。
 

臺式離心機、可見分光光度計、水浴鍋、1mL 玻璃比色皿、可調式移液槍、研缽、冰和蒸餾水。

試劑組成和配制：

試劑一×1 瓶，60 mL，4 ℃保存；

試劑二×1 瓶，20 mL，4 ℃保存；

試劑三×1 瓶，30 mL，常溫保存；

試劑四×1 瓶，10 mL，常溫保存；

試劑五×1 瓶，6 mL，常溫保存；

試劑六×1瓶，6 mL，常溫避光保存。

粗酶液提取：

1、細菌、細胞或組織樣品的制備：

細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量

（

104 個）：試劑一體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 試劑一），超聲波

破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；

8000g4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

組織：按照組織質量（

g）：試劑一體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，

加入 1mL 試劑一），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

2、血清（漿）樣品：直接檢測。

測定步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 420nm，蒸餾水調零。

2、樣品測定（在 EP 中加入下列試劑）：

試劑名稱（uL）

測定管        對照管

樣本 25       蒸餾水 25

試劑一100 100

試劑二400 400

混勻，37℃水浴 1 小時

試劑三525 525混勻，8000 g，25℃離心 10 min；取上清液，在 EP 管中加入下列試劑

上清液  650 650

試劑四 150 150

試劑五 100  100

試劑六  100 100

混勻，室溫靜置 15min，420nm 處讀取吸光值 A，計算ΔA=A 測定管-A 對照管。對照管只要做一管。

注意：

1、試劑六如出現沉淀，靜置后取上清使用。

2、ΔA（A 測定管-A 對照管）若出現負值，可能是酶活性較低，可將反應時間 1h 延長到 2h，相應的在計算

公式中除以 2。

酶活性計算：

標準條件下測定的回歸方程為 y =3.8488x +0.0057，R2 = 0.9983；；x 為標準品濃度（μmol/mL），y 為吸光值 A。

1、血清（漿）GLS 活性

單位定義：每 mL 血清（漿）每 min 催化谷氨酰胺生成 1nmol 氨定義為一個酶活力單位。GLS（

nmol /min /mL）＝ (ΔA-0.0057) ÷3.8488×V 反總÷V 樣÷T×1000=181.8×(ΔA -0.0057)

2、組織、細菌或細胞 GLS 活性

（1）按樣本蛋白濃度計算：

單位定義：每 mg 蛋白質每 min 催化谷氨酰胺生成 1nmol 氨定義為一個酶活力單位。

GLS（nmol /min /mg prot）＝ (ΔA-0.0057) ÷3.8488×V 反總÷(V 樣×Cpr)÷T×1000=181.8×(ΔA -0.0057)÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算：

單位定義：每 g 組織每 min 催化谷氨酰胺生成 1nmol 氨定義為一個酶活力單位。

GLS（nmol/min/g 鮮重）＝(ΔA-0.0057)÷3.8488×V 反總÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T×1000=181.8×(ΔA -0.0057)÷W

（3）按細菌或細胞密度計算

單位定義：每 1 萬個細菌或細胞每 min 催化谷氨酰胺生成 1nmol 氨定義為一個酶活力單位。GLS

（nmol/min/104 cell）＝(ΔA-0.0057) ÷3.8488×V 反總÷(500× V 樣÷V 樣總)÷T×1000

=0.3637×(ΔA-0.0057)V 樣總：加入提取液體積，1 mL；T：反應時間，60min；V 反總：反應體系總體積，1.05mL；V 樣：加入反應體系中樣本體積，0.025mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500 萬; 1000，μmol 到 nmol 換算系數。