在我們研究某種疾病的發(fā)病機制或者某種藥物的作用靶點時，經常需要建立目的基因過表達或基因敲除的細胞模型，目前構建穩(wěn)轉細胞株及部分敲除細胞株最常用的方式之一是慢病毒法，慢病毒因其可以轉染幾乎所有種類的細胞，且在轉染后可以整合到細胞的基因組而長期表達的優(yōu)勢，是目前較為主流的構建方法，但慢病毒構建的穩(wěn)轉細胞株相對于野生型沒有生長優(yōu)勢；此外，慢病毒對目的基因的載量也有限。因此，尋找一種高效簡便可替代慢病毒法的方法顯得尤為重要。

轉座子的出現(xiàn)為構建基因編輯細胞株提供了一個全新的視野。轉座子也被稱為跳躍基因，由Barbara McClintock教授在上世紀50年代發(fā)現(xiàn)，并于1983年因此發(fā)現(xiàn)而獲得諾貝爾醫(yī)學獎，是指一段DNA序列由基因組的一個位置跳躍到另一個位置。轉座子主要包含兩種類型：

☑ 一類轉座子：逆轉座子（retrotransposons），自身不表達轉座酶，先轉錄為RNA，通過RNA的反轉錄獲得cDNA，cDNA在整合酶的作用下轉移到其他基因組位置。

☑ 二類轉座子：DNA轉座子（DNA transposons），通過自身編碼的轉座酶直接切割轉座子所在DNA序列，實現(xiàn)序列的轉移。在脊椎動物中發(fā)現(xiàn)的轉座子系統(tǒng)中，以睡美人轉座子（SleepingBeauty）和piggyBac轉座子等DNA轉座子最為常見。

睡美人轉座子是由科學家Levis于1997年在脊椎動物中首個發(fā)現(xiàn)的轉座子， 其通過生物信息學方法分析8種鮭魚中12個Tc1類轉座酶序列，找出了其中的保守序列，確定了已經滅絕的鮭魚中具有活性的轉座酶的基因序列，并稱其為睡美人轉座子。但睡美人轉座子對宿主要求嚴格，且存在轉座效率不穩(wěn)定等情況，限制了其廣泛應用，而piggyBac轉座子則因其特異的整合位點、精密切割以及廣泛存在的特性被大家所青睞。

PiggyBac轉座子結構與機制

PiggyBac轉座子（粉紋夜蛾）是一個2475bp長的可自主轉移元件，兩末端分別有一個由13bp和19bp的TIR序列組成的亞末端重復序列，兩端TIR序列之間的間隔分別是3bp（5’端）和31bp（3’端），在兩個亞末端重復序列之間，有一個1.8kb的開放閱讀框，編碼由594個氨基酸組成、分子量大小為64KD的PiggyBac轉座酶。如下圖所示：

PiggyBac屬于II類轉座子，通過“剪切-粘貼”機制移動，即從基因組一個位置轉座到另一個位置，不留下序列本身（與I類啟動子通過“復制-粘貼”的移動方式不同）。

通過對PiggyBac超家族成員序列比對結果分析，發(fā)現(xiàn)PiggyBac轉座酶保守的氨基酸位點為D268、D346和D447，與許多其它的轉座酶和逆轉錄酶的保守結構域DDE類似，這三個位點參與了幾乎所有的轉座活動，包括DNA切割、發(fā)夾結構形成和目的序列的插入。具體的整合過程如下圖所示：

PiggyBac轉座酶結合到轉座子DNA序列兩端，開始精確地切割每條DNA鏈轉座子DNA的3’端，形成3’-OH結構；之后3’-OH攻擊互補鏈5’末端TTAA與轉座子間的磷酸二酯鍵，導致互補鏈DNA斷裂，釋放轉座子，同時轉座子兩端形成發(fā)夾結構；找到新的TTAA四堿基整合位點后，轉座酶伸展轉座子的發(fā)夾結構，暴露3’-OH，同時3’-OH攻擊TTAA整合位點的5’端，形成新的磷酸二酯鍵；互補鏈及轉座子釋放位點處的單鏈缺口的修復由宿主因子完成，轉座完成。

PiggyBac轉座子載體系統(tǒng)組成

PiggyBac轉座子在發(fā)現(xiàn)后經過了一系列優(yōu)化和改造的過程，如轉座酶密碼子優(yōu)化，以及兩端TIR序列的簡化，最后形成了一套完整的PiggyBac載體系統(tǒng)。PiggyBac載體系統(tǒng)成員主要有：一個輔助質粒：編碼轉座酶；一個轉座子質粒：含優(yōu)化的兩端亞末端反向重復序列，中間是被轉座區(qū)域，可插入我們想轉座到宿主基因組中的目的基因序列。

實驗時需同時將輔助質粒和轉座子質粒共同轉化靶細胞，輔助質粒編碼的轉座酶識別轉座子質粒兩端的TIR序列并切割，釋放的被轉座區(qū)被轉座酶整合到宿主基因組中含TTAA序列的位點，并在被轉座區(qū)兩端出現(xiàn)TTAA重復序列。

在不降低轉座效率的情況下，兩端優(yōu)化后的TIR序列間可插入10kb左右的序列，研究表明，在小鼠中通過受精卵注射的方式，用PiggyBac轉座子載體在基因組插入細菌人工染色體（BACs，150kb-300kb），轉座效率最高的達到了45%（F0代中有45%的小鼠攜帶了BACs）。

應用

1. 作為非病毒載體

與傳統(tǒng)的病毒載體相比，PiggyBac具有以下幾大優(yōu)點：首先是安全性高、操作方便（可直接用質粒轉化細胞）；其次是載體容量大（10kb-20kb），可實現(xiàn)多基因的共表達；第三是可通過調節(jié)轉座子質粒和輔助質粒的比例，提高外源基因的整合效率，并且可通過反向PCR精確確定目的基因插入的位置；第四是再次轉座后實現(xiàn)精確切離；第五是轉座后不引起染色體重排等不穩(wěn)定現(xiàn)象；最后是宿主范圍廣，轉座效率高，較少依賴宿主因子。

2. 基因治療

研究表明，PiggyBac轉座系統(tǒng)在Hela、HEK293、CHO及H1299等細胞中高效轉座，且攜帶的目的基因穩(wěn)定表達，因而是很有吸引力的基因治療候選載體之一。

3. 突變工具

PiggyBac再次轉座偏向插入基因內部且插入位點分布較廣，可用作基因插入突變的工具，這點為哺乳動物的基因組功能研究提供了較好的研究工具。

賽業(yè)OriCell目前已應用PiggyBac與基于傳統(tǒng)CRISPR/Cas9研發(fā)而成的CRISPR-Pro技術結合實現(xiàn)大片段基因敲除，與移碼突變相比，敲除更徹底，各項實驗數(shù)據(jù)表明采用CRISPR-Pro技術更高效。相比于傳統(tǒng)病毒法構建的細胞株，使用PiggyBac構建的細胞株具有更高的遺傳穩(wěn)定性。賽業(yè)OriCell扎根基因敲除領域14年，擁有上萬例基因敲除項目經驗，平臺成熟穩(wěn)定，目前已成功敲除細胞株種類超過198種，成功保障，安全無憂。

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