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實時熒光定量PCR檢測方法-SYBR Green I 法與TaqMan 探針法

瀏覽次數:4528 發布日期:2020-6-18  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

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既然儀器已經備好了,那么該怎樣選擇檢測方法呢?

眾所周知,qPCR依托于熒光檢測技術,通過使用DNA結合染料、熒光PCR引物或探針等實時監測目的基因的擴增,從而對目的基因進行定量分析。為了避免在實驗時出差錯,下面就跟著小編一起來看一下常用的經典方法吧~

1、 DNA結合染料—SYBR Green I 法

 

•  原理:SYBR Green I 是一種DNA結合染料,其與雙鏈DNA結合后,熒光大大增強,DNA與染料結合所釋放的熒光量與dsDNA的數量成正比。因此,檢測到的熒光信號可反映出PCR體系存在的雙鏈DNA數量。

•  特征:可逆熒光,最大吸收波長497nm,最大發射波長520nm。

•  適用情況:非特異性的熒光染料,不能識別特定的雙鏈,只要是雙鏈(包括非特異性擴增產物、引物二聚體等)就會結合發光,在臨床上使用可能會有假陽性發生。但該方法容易建立實驗體系,可進行熔點分析,通用性好,價格相對較低,在科研中使用比較普遍。

 

2 、TaqMan 探針法

 

•  原理:檢測時除了需要一對特異性引物外,還需要一條與靶序列互補配對的寡核苷酸鏈—TaqMan探針,其5’末端包含熒光報告基團R,3’末端為淬滅基團Q。當探針與靶序列互補配對時,熒光基團發射的熒光因與3’端的淬滅基團接近而淬滅。在進行延伸反應時,聚合酶的5’核酸外切酶活性將探針切斷,使得熒光基團與淬滅劑分離,發射熒光。熒光信號和產物的量相匹配。

•  特征:檢測到的是積累熒光,隨著循環數的增加,釋放出來的熒光基團不斷積累。

•  適用情況:特異性較強,可進行多重qPCR分析,但成本較染料法要高一些,實驗構建相對復雜。常用的熒光基團推薦:FAM、VIC、HEX、CY5等。

 

3 、分子信標(molecular beacon)

 

•  原理:分子信標方法在檢測時除了需要一對引物以外,還需要一條呈發夾結構的寡核苷酸探針(25-40nt),分子信標的 5'端附有熒光報告基團,3'端附有淬滅基團,環被設計成與靶序列互補的15–30核苷酸,其兩端各有5-7個核苷酸互補形成莖結構,將報告基團與淬滅基團連接到一起。發夾結構中,由于報告基團接近淬滅基團,監測不到熒光信號,當環的部分與核酸序列互補配對,分子信標打開成鏈狀,使得熒光基團與淬滅劑分開,發射熒光。

•  特征:莖環結構,也是積累熒光。

•  適用情況:高特異性、可以用于多重反應,適合區分等位基因。但不能做熔點分析;發夾的莖結合過強過弱都不合適,過強的話,信標不能與靶標正確雜交,過弱的話,會隨機折疊成非發夾結構,導致產生雜信號。常用的熒光基團有FAM 、Texas Red等。

 

4  、熒光共振能量傳遞(FRET)

 

•  原理:FRET探針又稱雙雜交探針,由兩條相鄰探針組成。第一個探針3'端帶有供體基團,第二個探針的5'端帶有受體基團,在PCR反應的退火步驟,兩條探針頭尾相連地分別雜交在靶標序列上,熒光分子接近,從供體到受體產生熒光共振能量傳遞,受體熒光信號的增加與擴增子出現的量成比例。

•  特征:由于FRET探針是靠近發光,所以檢測信號是實時信號,而非積累熒光。

•  適用情況:除引物外需要設計兩條探針,通用性不高;需挑選合適的供體及受體基團,供體基團發射波長與受體基團的激發波長需顯著重疊,而供體基團發射波長與受體基團的發射波長要明顯分離。可做熔點分析,特異性較強。

 

5 、 LUX Primers

 

•  原理:LUX (light upon extention) 引物是通過熒光標記的引物,使引物可以實現探針的功能。其原理和分子信標類似,LUX引物也是發夾結構,其中一條引物3’端用熒光報告基團標記。在沒有單鏈模板的情況下,該引物自身配對,形成發夾結構,使熒光淬滅。在模板存在的情況下,引物與模板配對,發夾結構打開,產生熒光信號。

•  特征:積累熒光;不需要額外設計探針。

•  適用情況:不能進行熔點分析,通用性比不上SYBR Green I。但不需要專門設計探針,同時不會受非特異性擴增產物和引物二聚體的影響,特異性較SYBR Green I強。

【以上內容來源于網絡整理,侵刪】

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