養好細胞注意點

（一）冷凍管應如何解凍 

取出冷凍管后，須立即放入37 ℃ 水槽中快速解凍，輕搖冷凍管使其在1分鐘內全部融化，并注意水面不可超過冷凍管蓋沿，否則易發生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時，必須注意安全，預防冷凍管的爆裂。

（二）細胞冷凍管解凍培養時，DMSO如何處理

在細胞解凍之后，可直接離心去除DMSO，用新鮮的培養基懸浮后直接放入含有 新鮮培養基的培養角瓶中進行細胞培養，如此可避免解凍后細胞生長受到DMSO影響。

（三）可否使用與原先培養條件不同的培養基

每一細胞株均有其特定使用且已適應的細胞培養基，若驟然使用和原先提供培養條件不同的培養基，細胞大都無法立即適應，造成細胞無法存活，不應該馬上替換。

（四）可否使用與原先培養條件不同的血清種類

 血清是細胞培養上一個極為重要的營養來源，所以血清的種類和品質對于細胞的生長會產生極大的影響。來自不同物種的血清，在一些物質或分子的量或內容物上都有所不同，血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。

（五）何謂 FBS，FCS，CS，HS

FBS （fetal bovine serum） 和 FCS （fetal calf serum） 是相同的意思，兩者都是指胎牛血清。CS （calf serum） 則是指小牛血清。HS （horseserum） 則是指馬血清。

（六）培養細胞時應使用 5% 或 10% CO₂

一般培養基中大都使用 HCO₃^-/CO₃^2-/H⁺ 作為 pH 的緩沖系統，而培養基中 NaHCO₃ 的含量將決定細胞培養時應使用的 CO₂ 濃度。理論當培養基中 NaHCO₃ 含量為每公升 3.7 g 時，細胞培養時應使用 10% CO₂；當培養基中 NaHCO₃ 為每公升 1.5 g 時，則應使用 5% CO₂ 培養細胞。

（七）何時須更換培養基。培養基中是否須添加抗生素。

視細胞生長密度而定，或遵照細胞株基本數據上的更換時間，按時更換培養基即可。

一般正常培養狀態下，培養基中可以添加抗生素。 按1％體積分數加入雙抗貯存液(青霉素+鏈霉素)，使青霉素和鏈霉素的終濃度分別為100 U／mL和100 μ／mL。

(八）貼壁細胞傳代時所使用的 trypsin-EDTA 濃度及相應處理

一般使用的 trypsin-EDTA 濃度為 0.25% trypsin-0.53mMEDTA.4 Na。第一次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中，保存于 –20 ℃，避免反復冷凍解凍造成 trypsin 的活性降低，并可減少污染的機會.。

（九）將一般動物細胞離心下來，離心速率多少

回收動物細胞，其離心速率一般為 1 000 rpm，5~10 分鐘，過高的轉速，將造成細胞死亡。

（十）細胞的接種密度

依照細胞株基本數據上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細胞數太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長的重要原因之一。

（十一）細胞冷凍培養基的成分及DMSO的等級

動物細胞冷凍保存時最常使用的冷凍培養基是含 5~10% DMSO （dimethyl sulfoxide） 和 90~95 % 原來細胞生長用的新鮮培養基均勻混合。注意：由于 DMSO 稀釋時會放出大量熱能，故不可將 DMSO 直接加入細胞液中，必須使用前先行配制完成。冷凍保存使用的 DMSO 等級，必須為 Tissue culture grade 的 DMSO ，其本身即為無菌狀況，第一次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中避光保存。

（十二）冷凍保存細胞的方法及冷凍細胞濃度

將貼壁細胞消化后離心收集，懸浮細胞直接離心收集，以含有DMSO完全培養基或胎牛血清的凍存液重懸細胞至終濃度約1x10⁶/ml。。以每管1～2ml分裝至凍存管中。用絕熱材料包裹置-70攝氏度冰箱冷凍過夜。次日保存到液氮中。 

冷凍管內細胞數目一般為 1x10⁶ cells/ml vial，融合瘤細胞則以 5x10⁶ cells/ml vial 為宜。