1. 慢病毒對各種細胞和組織的親嗜性不同，用戶使用Invabio提供的慢病毒之前可以通過查閱相關文獻，了解慢病毒對您的目的細胞的親嗜性，感染復數（MOI 值）以及在體內（in vivo）注射所需要的病毒量。如果沒有相關文獻支持，可以通過感染預實驗得到合適的感染復數（MOI 值）（使用24孔板檢測病毒對目的細胞的親嗜性）

① 慢病毒感染目的細胞預實驗注意事項

A． 測定慢病毒對目的細胞的親嗜性時，需要同時設置對慢病毒親嗜性較高的（HEK293T，Hela） 細胞作為平行實驗的對照細胞。

B．在進行慢病毒感染實驗時,可以用完全培養基（培養目的細胞用）稀釋；理論上，含有血清、雙抗或者其他營養因子的完全培養基不影響慢病毒的感染效率。

C．Invabio提供的病毒單位為TU/ml，即每毫升中含有具有生物活性的病毒顆粒數。如：病毒滴度為>1X10⁸ TU/ml 即每毫升病毒液中至少含有1X10⁸個具有生物活性的慢病毒顆粒。

 

② 以24孔培養板為例，進行目的細胞和HEK293T 細胞的感染預實驗

實驗前按照不同的MOI設置不同的感染孔，并根據MOI和細胞數量計算所需要的病毒量，如有必要可以使用PBS溶液或者無血清培養基稀釋病毒原液

第一天，準備細胞：在24孔培養板接種若干孔，每個孔內接種3~5X10⁴個目的細胞，鋪板時細胞的融合率為50%左右，每孔培養基體積為100 μl；進行病毒感染時細胞的融合度約為70%左右。

 

第二天，觀察細胞生長狀態，如細胞狀態較好則開始實驗：

1、取出4℃保存的病毒，使用臺式離心機離心20 秒（使病毒完全懸于離心管底部即可）；如果是凍存在-80℃的病毒需要先在冰上融化后使用。亦可以根據實驗室的實際情況將按照MOI 準確計算好的慢病毒稀釋到培養基中，并盡可能保證所獲得的含有慢病毒的培養基的總體積為最小體積，以期獲得最佳的感染效率。

 

2、病毒準備好之后，從培養箱中拿出細胞，

a 使用移液器吸取準確體積的病毒液加入準備好的培養基

b 吸去原細胞培養器皿中的培養基（如果細胞生長良好，密度適宜，則不用換液）

c 在目的細胞和對照細胞中分別加入計算好的病毒液

d 混勻后放于二氧化碳培養箱（37℃、5%CO₂）孵育過夜

 

注：感染前細胞的狀態好壞對最終的感染效果高低影響很大，所以務必保證加病毒之前，細胞處于良好的生長狀態。

 

如果慢病毒對目的細胞的感染效率偏低，則可以通過提高MOI 值來增加其感染效率，但是當MOI 高于20 時，我們建議客戶在培養基中加入ploybrene（8 μg/ml左右）來提高病毒的感染效率。

 

第三天，更換培養液：一般在24小時候后將含有慢病毒的培養液更換成正常培養液；在感染后觀察細胞狀態，如果慢病毒對細胞有明顯毒性作用而影響細胞生長狀態，可以最短在加病毒4小時候更換新鮮培養液后繼續培養（建議在8-12小時更換為宜）。第一次換液后，如果慢病毒對細胞沒有明顯毒性作用，按照正常培養條件培養換液。

 

第六天，感染效率檢測：在倒置熒光顯微鏡觀察熒光，估計慢病毒感染目的細胞的效率；如何由于目的基因較大而造成選擇的載體不能攜帶Marker Gene的，可以通Real-time RT-PCR檢測目的基因的表達來拍評估感染效率。