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實現蛋白marker與Annexin V雙染的同時檢測的實驗方法

瀏覽次數:7444 發(fā)布日期:2014-5-22  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負


要用AnnexinV雙染法測凋亡,又想同時標記蛋白marker,甚至還有胞內指標,可是PI和7-AAD都不能洗,怎么辦?

eBioscience的可固定細胞活力染料Fixable Viability Dye幫您完美解決

固定、破膜以及洗滌步驟不影響Fixable Viability Dye的染色,而PI、7-AAD的染色通常是放在其他抗體孵育完成后進行,不能洗滌即要上機檢測;對于胞內抗體的染色,由于經過了固定步驟,經過PI或7-AAD染色后所有的細胞都是陽性,所以他們只適合于胞膜染色的死活細胞鑒定 
   
實驗試劑
◎ Annexin V Apoptosis Detection kit (Cat. No. 88-8007, 88-8006, 88-8005, 88-8102, or 88-8008)
◎ 10X Binding buffer
◎ Annexin conjugated to APC, eFluor 450, FITC, PE or PerCP-eFluor 710
◎ Fixable Viability Dye eFluor® 660 (Cat. No. 65-0864), Fixable Viability Dye eFluor® 506 (Cat. No. 65-0866) or Fixable Viability Dye eFluor® 780 (Cat. No. 65-0865)
注意: Fixable Viability Dye eFluor® 450不推薦與AnnexinV檢測試劑盒同時使用
◎ Foxp3 Staining Buffer Set (Cat. No. 00-5523)
◎ Flow Cytometry Staining Buffer (Cat. No. 00-4222)
◎ PBS (azide- and serum/protein-free PBS) 
   
試驗方法   
1. 用蒸餾水稀釋 10X Binding Buffer 至 1X ;
2. 標記表面marker;
3. 用不含疊氮鈉及血清的PBS洗細胞兩次;
4. 在不含疊氮鈉及血清的PBS按1-10x106 cells/mL 的濃度重懸細胞;
5. 每1mL細胞中加入 1 μL of Fixable Viability Dye并立即渦旋混勻;
6. 2-8°C避光孵育30分鐘;
7. 孵育完成后,務必用含蛋白的緩沖液,如Flow Cytometry Staining Buffer洗兩次細胞;
8. 用1X Binding Buffer洗一次細胞;
9. 在1X Binding Buffer中按1-5x106 cells/mL濃度重懸細胞;
10. 100 μL細胞懸液中加入5 μL熒光標記的Annexin V;
11. 室溫避光孵育10-15分鐘;
12. 用1X Binding Buffer洗細胞一次;
13. 固定破膜,用破膜緩沖液洗細胞;
注意: 此時已經不需要保持緩沖液中的鈣離子,因為AnnexinV已經結合到細胞表面了
14. 進行胞內marker的標記;
15. 完成后上機分析。

更多關于Fixable Viability Dye的介紹,請看鏈接:
http://www.liankebio.com/ProductCenterShow/articleID/2013110007.html    

閱讀原文:http://www.liankebio.com/TechServiceShow/articleID/2014050023.html

發(fā)布者:杭州聯(lián)科生物技術股份有限公司
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