試劑和材料：
完全培養基（CCM）：α-MEM：α-低限量基礎培養基，含谷氨酰胺，無核苷酸或脫氧核苷酸；添加：20%附加L-谷氨酰胺 2mmol/L、經FBS雜交瘤純化，非熱滅活、青霉素100U/ml、鏈霉素100μg/ml。過濾除菌。儲存于4℃，不超過2周；
FDM（脂肪分化培養基）：①FDM：CCM包含0.5μmol/L IBMX，50μmol/mlIM和0.5μmol/L地塞米松。②異丁基甲基黃嘌呤（IBMX），1000×儲存液，用甲醇配制成0.5mmol/L。③吲哚美辛（IM）：1000×儲存液，用甲醇配制成50mmol/L。④地塞米松：1000×儲存液，用水配制成0.5mmol/L；
PBSA；
胰蛋白酶/EDTA；
聚丙烯離心管，15ml和50ml；
組織培養皿，6孔，孔面積為9.6cm2；
0.85%臺盼藍鹽溶液；
中性福爾馬林緩沖液，10%；
ORO工作液：ORO用異丙醇配制成1%，3份。PBSA，2份。70μm細胞濾網過濾；
改良的Neubauer血細胞計數器；

實驗方法：
從單層細胞中收集MSCs；
向6孔培養板的每個孔中加入2ml CCM，共有1×105個細胞（適用于人或大鼠）。最終密度約1×103個細胞/cm2；
將上排3個孔標記為“成脂”，下排3個孔標記為“陰性”；
在37℃，5%CO2環境下孵育，每隔兩天更換一次培養基，直到細胞達到7.%—80%匯合；
達到所需的細胞密度時，從孔中吸出完全樣機，向6孔培養板上排的孔中加入2ml FDM，向下排的孔中加入2ml CCM；
在37℃，5%CO2環境下孵育，每隔兩天更換一次培養基。ORO檢測時，于21天對細胞進行染色；
從培養箱中取出分化后的MSCs，每孔中的單層細胞用2ml PBSA潤洗兩次；
每孔中加入2ml福爾馬林，室溫固定單層細胞10min；
吸出福爾馬林，每孔中加入2ml PBSA潤洗兩次后，再用2ml蒸餾水潤洗一次；
加入2ml ORO工作液，室溫孵育30min；
過量PBSA潤洗各孔，直到“陰性”孔中的背景染色最大限度地清除；
用顯微鏡觀察標記為“成脂”的單層細胞評價脂滴的染色程度。成脂分化達到令人滿意的水平時，單層細胞ORO著色面積超過30%。此時，單層細胞可在4℃ PBSA中最多存放7天�；蛘�，將ORO從著色的單層細胞中提取出來，用先前描述的方案進行測定；