一、懸浮細胞的分離方法
1、將血液、羊水、胸水或腹水等懸液直接轉至離心管中，1000rpm/分鐘離心5分鐘。
2、去掉上清，離心沉淀用無鈣、鎂的PBS清洗后1000rpm/分鐘離心5分鐘。此步重復兩次。
3、用培養基重懸，調整適當細胞濃度后分瓶培養。
4、如選用懸液中某種細胞，可采用離心后的細胞分層液收獲目的細胞。

二、實體組織材料的分離方法

（一）機械分散法
1、纖維成分很少的腦組織，部分胚胎組織，用剪刀剪碎至1mm³的組織塊。
2、用PBS清洗兩次后
①用吸管吹打，分散組織細胞。
②或將已充分剪碎分散的組織放在注射器內（用九號針），使細胞通過針頭壓出。
③或在不銹鋼紗網內用鈍物（注射器鈍端）壓擠使細胞從網孔中壓擠出。
3、收集細胞轉入離心管中，1000rpm/分鐘離心5分鐘。
4、去上清，加入含血清的培養基，重懸后移至培養瓶中培養。

（二）消化分離法
1、酶消化分離法（過夜冷消化法）
①細胞間質較少的軟組織，如肝、腎、甲狀腺、羊膜、胚胎組織、上皮組織等，用Hanks液清洗組織三次，剪成碎塊大小為4毫米左右。
②再用Hanks液洗2-3次以除去血球和脂肪組織。
③加入0.25%的胰蛋白酶，搖勻后放4℃過夜。
④次日再用Hanks液洗滌，棄去上清，共洗2-3次。
⑤加入少量含血清的培養基吹打分散，細胞計數，按適當的濃度分瓶培養。

2、非酶消化法（EDTA消化法）
①把組織塊剪碎，呈1mm³大小的組織塊。
②將碎組織塊在平皿中用無鈣鎂PBS洗2-3次。
③加入消化液（胰蛋白酶或膠原酶或EDTA）于37℃水浴中作用適當時間（中間可輕搖1~2次），若組織塊膨松呈絮狀可終止，若變化不大可更換一次消化液，繼續消化直至膨松絮狀為止。
④棄去上清，加入含有鈣、鎂離子的培養基中止消化反應，并洗滌2-3次后，加入完全培養基。
⑤用吸管吹打，使細胞充分散開后用紗網過濾后分瓶培養。