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瑞沃德直播預告:帶你解鎖腦刺激及腦機接口技術

瀏覽次數(shù):2527 發(fā)布日期:2022-7-18  來源:本站 本站原創(chuàng),轉載請注明出處
 
想了解腦神經(jīng)研究最新、熱門技術?
想知道腦刺激主要有哪些分類?
腦機接口技術如何開展工作?
腦機接口技術應用及進展目前是怎樣?

全線賦能“沃”的實驗之實驗方法實戰(zhàn)教程
直播第七期為大家?guī)?/span>
《腦刺激及腦機接口》
從技術原理、類別介紹和應用方向
到技術進展,為你開闊研究新思路

直播時間
7月19日(周二)19:00

報名方式


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主題:腦刺激技術

  • 經(jīng)顱電刺激
  • 經(jīng)顱磁刺激
  • 感覺刺激
  • 深部腦刺激
  • 光遺傳刺激

講師:周正


瑞沃德高級產(chǎn)品方案經(jīng)理,專注于神經(jīng)環(huán)路研究,在疼痛及漸凍癥模型制備,腦刺激/光纖記錄/在體電生理實驗上有著豐富的經(jīng)驗,致力于為客戶提供專業(yè)的神經(jīng)信號實驗方案。

主題:腦機接口技術

  • 無創(chuàng)式腦機接口
  • 半植入式腦機接口
  • 全植入式腦機接口

講師:宋思賢

中國科學院大學碩士研究生,專注于腦機接口研究,特別是無創(chuàng)式腦機接口和全植入式腦機接口,研究方向主要為神經(jīng)信號處理和環(huán)路解析。

上期直播間互動問題

這次我們全部為小伙伴解答

1. PCR實驗重復性很差是什么原因呢?
答:這個看是哪類重復性很差。
如果是同個批次內的復孔重復差,第一個主要原因:以加樣操作不準確導致,可以使用排槍或規(guī)范移液槍使用來減少操作誤差,還有需要定期對移液槍進行校準哦;第二個原因:儀器使用年限過長,PCR儀器的每個孔的溫度存在差異,這個需要檢修校準;第三個原因:模板濃度太低,樣品初始濃度越低,,重復性越差,應減少樣品的稀釋倍數(shù)。

如果是不同批次間的重復差,除卻以上原因,還存在試劑上的批次差異,應當減少試劑批次和種類的差異,盡量選擇同一生產(chǎn)商同一批次的產(chǎn)品進行。

2.請問我的標準曲線擴增不出來是怎么回事?

答:這個只能例舉一些情況,需要進行排查。首先可以使用一個明確知道是正常PCR體系(陽性對照)進行測試,這樣排查下是否是PCR試劑儀器等因素,第二,由于是標準曲線,標準樣DNA模板,用NanoDrop或者Qubit核酸蛋白定量儀檢查模板質量和濃度。

3.出現(xiàn)片狀拖帶該怎么解決呢?
答:首先出現(xiàn)片狀帶往往是因為PCR體系中DNA酶過量、鎂離子濃度過高或者退火溫度低,循環(huán)次數(shù)等原因造成,需要挨個排查,退火溫度可以通過設置退火溫度梯度去摸索其條件,往往需要提高退火溫度,PCR體系的問題可以適當減少PCR體系中酶、鎂離子的用量。循環(huán)次數(shù)可以適當減少也可以避免一些情況。這些條件都需要摸索。此外,也可能是DNA電泳的瓊脂糖凝膠問題,需仔細排查。

4.如何判斷假陰性或假陽性?
答:PCR實驗中,假陽性的發(fā)生率比假陰性的發(fā)生率要低,這是因為往往PCR引物設計時候是特異性高的引物,往往可以根據(jù)擴增條帶在DNA電泳下的條帶大小進行產(chǎn)物長度的判定來驗證,此外,排除假陽性的結果往往都是擴增產(chǎn)物進行測序驗證可以進一步論證其結果可靠性。

假陰性的結果就比較復雜了,一般會設計一個陽性對照實驗,來排除PCR體系中試劑本身失效或者PCR儀器帶來影響,然后還需要檢查實驗過程所使用DNA模板的情況,一般NanoDrop或者Qubit核酸蛋白定量儀檢查模板質量和濃度。

5.如何確定設置的PCR的體系是正確的呢?
答:設置陽性對照往往是一個不錯的選擇,可以檢查PCR體系中試劑(比如酶的活性)是否能正常使用。此外引物與模板情況,如果嚴謹,可以檢查引物與模板的質量和濃度,再者就是一個合適的退火溫度,可以設置溫度梯度進行PCR,然后DNA電泳后觀察條帶情況來進行選擇合適的退火溫度。最后就是確定擴增產(chǎn)物的正確性,是DNA電泳判讀擴增條帶長度是否準確,其次是膠回收進行擴增產(chǎn)物的測序驗證。

6.如何確定引物的濃度?
答:這個需要根據(jù)情況,引物合成公司會首先提供每個引物的原始儲存濃度,然后根據(jù)其濃度加入雙蒸去離子水稀釋,稀釋成PCR體系使用的濃度,然后就是換算問題,一般引物合成公司會給一個度量指標是OD,一般來說會附帶一個說明書,一般1OD是5nmol,也就是說加入500uL水后就是10umol/L,根據(jù)PCR體系推薦的引物摩爾數(shù),計算1uL引物加入也就是10pmol的量,這塊往往這個根據(jù)PCR試劑盒會有推薦引物濃度(根據(jù)PCR體系不同進行調整)。

7.PCR擴出來的條帶亮度很弱,如何排查原因呢?
答:一般擴出來條帶是正確大小長度下還是很弱的亮度的話,往往是擴增效率不高,這個可以首先加入陽性對照,確保儀器和PCR試劑盒如酶是正常的。第二要考慮DNA模板的問題,先檢查模板質量和濃度,濃度過低條帶暗,濃度過高,PCR反應會受到抑制,擴增效率不高,還有DNA純度不高也會影響擴增效率。第三,退火溫度,這塊可以設置一個退火溫度梯度進行試驗,確定最佳退火溫度,最后,就是引物的問題,引物設計不太好,存在引物自身或引物間的互補配對情況。

8.如何設計引物,注意事項有哪些呢?
答:引物設計的原則非常多,需要考慮的因素很多,但是其最大的原則是特異性!

特異性:必須要保證引物與非特異擴增序列的同源性不要超過70%或有連續(xù)8個互補堿基同源。

長度:一般引物長度在15-30bp,有時候可能因特殊原因50bp也可。

GC含量:一般40%-60%。

堿基隨機分布:引物堿基序列分布盡量隨機,不要連續(xù)很多個相同堿基。

引物的二級結果應當避免:引物自身、或者兩個引物間,盡量不要有互補結構。

引物的3′端必須高度保守:引物3′端務必與模版完全匹配,特別是最后一個堿基。這樣DNA酶才能順利匹配模板DNA進行復制延伸。

引物的5′端可以進行修飾:可以加入酶切位點,標記熒光、生物素等,也可以設計引入突變位點等情況。

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